| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-28页 |
| 1 遗传标记在海洋贝类群体遗传学研究中的应用 | 第12-16页 |
| 1.1 遗传多样性的概念 | 第12页 |
| 1.2 群体遗传多样性检测方法的发展及其在海洋贝类中的应用 | 第12-16页 |
| 1.2.1 形态标记 | 第12-13页 |
| 1.2.2 细胞学水平 | 第13-14页 |
| 1.2.3 同工酶标记 | 第14页 |
| 1.2.4 分子标记 | 第14-16页 |
| 2 头足类遗传多样性研究进展 | 第16-22页 |
| 2.1 头足类概述 | 第16页 |
| 2.2 形态学研究 | 第16-17页 |
| 2.3 细胞学研究 | 第17-18页 |
| 2.4 同工酶研究 | 第18-19页 |
| 2.5 分子标记研究 | 第19-22页 |
| 2.5.1 线粒体 DNA 标记 | 第19-20页 |
| 2.5.2 核基因（微卫星）标记 | 第20-22页 |
| 3 长蛸遗传学研究 | 第22-27页 |
| 3.1 长蛸生物学 | 第22-25页 |
| 3.1.1 概述 | 第22页 |
| 3.1.2 外部形态与内部结构 | 第22-24页 |
| 3.1.3 生态习性与分布 | 第24-25页 |
| 3.2 基于形态学的群体遗传结构 | 第25页 |
| 3.3 分子遗传学方面 | 第25-27页 |
| 4 研究构思 | 第27-28页 |
| 第二章 基于形态学测量的长蛸群体遗传结构分析 | 第28-50页 |
| 引言 | 第28-29页 |
| 1 材料与方法 | 第29-34页 |
| 1.1 取样 | 第29-30页 |
| 1.2 测量 | 第30-32页 |
| 1.2.1 体尺性状的测量 | 第31-32页 |
| 1.2.2 体重测量 | 第32页 |
| 1.2.3 吸盘数测量 | 第32页 |
| 1.3 数据处理及标准化 | 第32-33页 |
| 1.4 主成分分析 | 第33页 |
| 1.5 判别分析及判别函数 | 第33页 |
| 1.6 单因素方差分析 | 第33-34页 |
| 1.7 聚类分析 | 第34页 |
| 2 结果 | 第34-45页 |
| 2.1 长蛸腕式与腕间膜式 | 第34-35页 |
| 2.2 性状间相关性及变量的相关性 | 第35-38页 |
| 2.2.1 性状间相关性 | 第35-37页 |
| 2.2.2 变量的相似性 | 第37-38页 |
| 2.3 构建主成分及贡献率 | 第38-39页 |
| 2.4 判别分析 | 第39-44页 |
| 2.5 吸盘数目及茎化腕突起差异性分析 | 第44页 |
| 2.6 聚类图 | 第44-45页 |
| 3 讨论 | 第45-50页 |
| 3.1 长蛸形态特征 | 第45-46页 |
| 3.2 形态性状间相关性 | 第46-47页 |
| 3.3 多元分析方法在分析长蛸形态差异方面的应用 | 第47-48页 |
| 3.4 长蛸 10 个地理群体形态差异比较 | 第48-50页 |
| 第三章 基于 SSR 标记的长蛸群体遗传结构分析 | 第50-70页 |
| 引言 | 第50-51页 |
| 1 材料与方法 | 第51-57页 |
| 1.1 样品的分布与采集 | 第51-52页 |
| 1.2 实验方法 | 第52-57页 |
| 1.2.1 模板 DNA 的提取 | 第52-53页 |
| 1.2.2 测定 DNA 浓度 | 第53页 |
| 1.2.3 PCR 扩增与产物检测 | 第53-55页 |
| 1.2.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳检测多态性 | 第55-56页 |
| 1.2.5 数据处理与分析 | 第56-57页 |
| 2 结果 | 第57-65页 |
| 2.1 长蛸群体遗传多样性 | 第57-60页 |
| 2.2 群体间遗传分化与遗传距离 | 第60-61页 |
| 2.3 聚类分析及分子方差分析 | 第61-64页 |
| 2.4 距离产生隔离模式（Isolation by Distance，IBD） | 第64-65页 |
| 3 讨论 | 第65-70页 |
| 3.1 长蛸群体的遗传多样性 | 第65-66页 |
| 3.2 哈迪温伯格平衡 | 第66页 |
| 3.3 群体遗传结构 | 第66-67页 |
| 3.4 受海流影响的遗传分化 | 第67-70页 |
| 参考文献 | 第70-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 个人简历 | 第82页 |
| 硕士期间学术成果 | 第82-83页 |