| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 縮略语/符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 研究现状、成果 | 第11-12页 |
| 研究目的、方法 | 第12-13页 |
| 1.1 实验材料与器械 | 第13-17页 |
| 1.1.1 实验所用的细胞 | 第13页 |
| 1.1.2 实验所用的试剂 | 第13-14页 |
| 1.1.3 实验所用的抗体 | 第14-15页 |
| 1.1.4 实验所用的主要仪器和设备 | 第15-16页 |
| 1.1.5 细胞培养体系及主要试剂配制 | 第16-17页 |
| 1.2 方法 | 第17-25页 |
| 1.2.1 人胚胎干细胞培养、传代及冻存 | 第17-18页 |
| 1.2.2 分组比较hESC向RPE细胞诱导效率 | 第18页 |
| 1.2.3 hESC-RPE细胞分离提纯及传代 | 第18-19页 |
| 1.2.4 ARPE-19细胞系传代、冻存及复苏 | 第19-20页 |
| 1.2.5 细胞总RNA提取 | 第20-21页 |
| 1.2.6 细胞总RNA逆转录 | 第21页 |
| 1.2.7 实时荧光定量逆转录聚合酶链反应 | 第21-23页 |
| 1.2.8 蛋白免疫印迹法鉴定hESC-RPE细胞 | 第23-24页 |
| 1.2.9 细胞免疫荧光法鉴定hESC-RPE细胞 | 第24页 |
| 1.2.10 hESC-RPE细胞吞噬功能检测 | 第24页 |
| 1.2.11 统计学处理 | 第24-25页 |
| 1.3 结果 | 第25-33页 |
| 1.3.1 H1 hESC形态学特征 | 第25页 |
| 1.3.2 形态学观察比较对照组和CompoundC处理组诱导效率 | 第25-26页 |
| 1.3.3 PAX6、MITF、CRALBP、RPE65 mRNA在对照组和CompoundC处理组中的表达 | 第26-27页 |
| 1.3.4 hESC-RPE细胞分离纯化 | 第27-28页 |
| 1.3.5 ARPE-19细胞系形态学特征 | 第28页 |
| 1.3.6 PAX6、MITF、CRALBP、RPE65 mRNA在hESC、ARPE-19、hESC-RPE细胞中的表达 | 第28-29页 |
| 1.3.7 PAX6、MITF、CRALBP、RPE65蛋白在hESC、ARPE-19、hESC-RPE细胞中的表达 | 第29-30页 |
| 1.3.8 hESC-RPE细胞免疫荧光结果 | 第30-32页 |
| 1.3.9 hESC-RPE细胞吞噬功能检测结果 | 第32-33页 |
| 1.4 讨论 | 第33-39页 |
| 1.4.1 hESC向RPE细胞定向诱导分化 | 第33-34页 |
| 1.4.2 RPE细胞标志基因和蛋白：Pax6、MITF、CRALBP、RPE65 | 第34-35页 |
| 1.4.3 Compound C促进hESC向RPE细胞定向诱导分化 | 第35-37页 |
| 1.4.4 hESC-RPE细胞分离提纯 | 第37页 |
| 1.4.5 hESC-RPE细胞功能鉴定 | 第37-39页 |
| 1.5 小结 | 第39-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第46-47页 |
| 综述 | 第47-60页 |
| 综述参考文献 | 第55-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
