中文英文缩写词对照表 | 第8-10页 |
中文摘要 | 第10-13页 |
Abstract | 第13-15页 |
1 引言 | 第16-17页 |
2 实验材料 | 第17-20页 |
2.1 实验动物 | 第17页 |
2.2 实验试剂 | 第17-19页 |
2.2.1 抗体 | 第17-18页 |
2.2.2 主要试剂 | 第18-19页 |
2.3 仪器与设备 | 第19-20页 |
3 实验方法 | 第20-30页 |
3.1 动物模型 | 第20页 |
3.2 细胞培养 | 第20页 |
3.3 细胞活性检测 | 第20-21页 |
3.4 WesternBlot | 第21-22页 |
3.4.1 蛋白提取 | 第21页 |
3.4.2 SDA-PAGE电泳 | 第21-22页 |
3.4.3 转膜 | 第22页 |
3.4.4 抗体孵育 | 第22页 |
3.4.5 显影 | 第22页 |
3.5 RNA提取和Real-timePCR | 第22-25页 |
3.5.1 RNA提取 | 第22-23页 |
3.5.2 RNA浓度测定 | 第23页 |
3.5.3 cDNA合成 | 第23页 |
3.5.4 Real-timePCR检测 | 第23-25页 |
3.6 流式细胞术 | 第25页 |
3.7 DCF检测 | 第25页 |
3.8 DHE检测 | 第25-26页 |
3.9 Nox4shRNA和Nox2siRNA转染实验 | 第26-27页 |
3.9.1 Nox4shRNA转染实验 | 第26页 |
3.9.2 Nox2siRNA转染实验 | 第26-27页 |
3.10 血肌酐(Cr)和血尿素氮(BUN)的检测 | 第27-28页 |
3.11 还原型谷胱甘肽(GSH)和丙二醛(MDA)的检测. | 第28页 |
3.12 糖原染色和免疫组化实验 | 第28-29页 |
3.13 图像数据分析软件及方法 | 第29-30页 |
4 实验结果 | 第30-48页 |
4.1 原儿茶醛减轻顺铂介导的细胞损伤 | 第30-31页 |
4.1.1 MTT检测原儿茶醛对人肾小管上皮细胞活性的影响 | 第30-31页 |
4.1.2 原儿茶醛减轻顺铂介导的HK2细胞损伤 | 第31页 |
4.2 原儿茶醛减轻顺铂介导的细胞程序性死亡 | 第31-33页 |
4.2.1 流式细胞术检测结果证实原儿茶醛减轻顺铂介导的细胞程序性死亡 | 第31-32页 |
4.2.2 原儿茶醛减轻顺铂介导的细胞程序性死亡相关通路蛋白的表达 | 第32-33页 |
4.3 原儿茶醛减轻顺铂介导的细胞炎症反应 | 第33-34页 |
4.4 原儿茶醛减轻顺铂介导的细胞氧化应激反应 | 第34-37页 |
4.4.1 DCF和DHE荧光染色检测结果证实原儿茶醛减轻顺铂介导的细胞氧化应激反应 | 第34-35页 |
4.4.2 原儿茶醛降低顺铂诱导的Nox家族主要成员Nox2和Nox4的表达水平 | 第35-37页 |
4.5 原儿茶醛可能通过Nox4依赖性机制降低顺铂诱导的HK2细胞损伤 | 第37-39页 |
4.5.1 分别构建Nox2和Nox4沉默细胞株 | 第37-38页 |
4.5.2 Nox4在原儿茶醛抑制顺铂诱导的HK2细胞损伤中的作用 | 第38-39页 |
4.6 原儿茶醛可能通过Nox4依赖性机制降低顺铂诱导的HK2细胞凋亡 | 第39页 |
4.7 原儿茶醛通过Nox4依赖性机制降低顺铂诱导的炎症反应 | 第39-40页 |
4.8 原儿茶醛在顺铂诱导的小鼠急性肾损伤中的保护作用 | 第40-43页 |
4.8.1 PAS染色和肾功能检测证实原儿茶醛降低顺铂诱导的小鼠急性肾脏损伤 | 第40-42页 |
4.8.2 原儿茶醛降低顺铂诱导的小鼠急性肾损伤模型中KIM1和NGAL水平变化 | 第42-43页 |
4.9 原儿茶醛显著降低顺铂诱导的小鼠急性肾损伤模型中的炎症反应 | 第43-44页 |
4.10 原儿茶醛显著降低顺铂诱导的小鼠急性肾损伤模型中的细胞程序性死亡 | 第44-45页 |
4.11 原儿茶醛通过Nox4减轻顺铂引起的小鼠急性肾损伤 | 第45-48页 |
4.12 MTT检测原儿茶醛对顺铂抗肿瘤细胞活性的影响 | 第48页 |
5 讨论 | 第48-53页 |
6 结论 | 第53页 |
7 参考文献 | 第53-59页 |
8 附录 | 第59-61页 |
9 致谢 | 第61-62页 |
10 综述 | 第62-82页 |
参考文献 | 第72-82页 |