| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 常用缩写词中英文对照表 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 第一部分 hUC-MSCs的分离纯化与鉴定 | 第16-27页 |
| 1 材料与方法 | 第16-22页 |
| 1.1 组织样本 | 第16页 |
| 1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第17-18页 |
| 1.4 试剂配制 | 第18-19页 |
| 1.5 实验方法 | 第19-22页 |
| 2 结果 | 第22-25页 |
| 2.1 hUC-MSCs形态学观察结果 | 第22页 |
| 2.2 hUC-MSCs表面标志蛋白检测结果 | 第22-23页 |
| 2.3 hUC-MSCs的成骨细胞诱导分化 | 第23-24页 |
| 2.4 hUC-MSCs的成脂肪细胞诱导分化 | 第24-25页 |
| 3 讨论 | 第25-26页 |
| 4 结论 | 第26-27页 |
| 第二部分 hUC-MSCs分泌因子对HDF的影响极其脂质体囊泡的制备 | 第27-39页 |
| 1 材料与方法 | 第27-34页 |
| 1.1 细胞样本 | 第27页 |
| 1.2 主要试剂 | 第27-28页 |
| 1.3 主要设备仪器 | 第28-29页 |
| 1.4 试剂配置 | 第29-30页 |
| 1.5 实验方法 | 第30-34页 |
| 2 结果 | 第34-37页 |
| 2.1 条件培养基中蛋白浓度的定量 | 第34页 |
| 2.2 考马斯亮蓝染色法测定条件培养基中的蛋白质 | 第34页 |
| 2.3 人原代真皮成纤维细胞中Ⅰ型胶原纤维的表达 | 第34-35页 |
| 2.4 条件培养基中细胞因子VEGF、IL-8、MCP-1的浓度 | 第35页 |
| 2.5 脐带间充质干细胞分泌因子脂质体囊泡电镜观察 | 第35-36页 |
| 2.6 脐带间充质干细胞分泌因子脂质体囊泡粒径 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-38页 |
| 4 结论 | 第38-39页 |
| 第三部分 hUC-MSCs分泌因子脂质体囊泡对伤口修复作用 | 第39-48页 |
| 1 材料与方法 | 第39-42页 |
| 1.1 实验动物 | 第39页 |
| 1.2 主要试剂 | 第39-40页 |
| 1.3 主要器材 | 第40页 |
| 1.4 实验方法 | 第40-42页 |
| 2 结果 | 第42-46页 |
| 2.1 伤口48h内变化 | 第42页 |
| 2.2 伤口第三天 | 第42-43页 |
| 2.3 伤口第五天 | 第43页 |
| 2.4 伤口第七天 | 第43-44页 |
| 2.5 观察大鼠伤口愈合情况及病理组织切片HE染色判断其修复效果 | 第44-46页 |
| 3 讨论 | 第46-47页 |
| 4 结论 | 第47-48页 |
| 展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 综述 不同来源的干细胞对皮肤创伤愈合的研究进展 | 第54-66页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 在学期间承担/参与的科研课题与研究成果 | 第67-68页 |
| 个人简历 | 第68页 |
