| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文对照及英文缩写词表 | 第7-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-22页 |
| 1 多糖类化合物的研究进展 | 第12-17页 |
| 1.1 多糖的概述 | 第12页 |
| 1.2 多糖的提取和分离纯化方法的研究 | 第12-14页 |
| 1.3 多糖的结构研究 | 第14-16页 |
| 1.4 多糖的活性研究 | 第16-17页 |
| 2 中药藜芦的研究现状 | 第17-21页 |
| 2.1 藜芦的简介 | 第17-18页 |
| 2.2 藜芦的化学成分研究 | 第18-19页 |
| 2.2.1 藜芦生物碱类 | 第18页 |
| 2.2.2 茋类化合物 | 第18-19页 |
| 2.2.3 黄酮类化合物 | 第19页 |
| 2.3 藜芦生物碱的药理作用研究 | 第19-20页 |
| 2.3.1 降血压作用 | 第19页 |
| 2.3.2 对血液流变学及凝血作用的影响 | 第19页 |
| 2.3.3 抗血吸虫和抗真菌作用 | 第19-20页 |
| 2.3.4 抗肿瘤作用 | 第20页 |
| 2.4 中药十八反中有关藜芦的研究 | 第20-21页 |
| 2.4.1 人参与藜芦配伍的研究 | 第20-21页 |
| 2.4.2 藜芦生物碱与芍药苷配伍引起的化学反应 | 第21页 |
| 3 选题的依据、目的和意义 | 第21-22页 |
| 第二章 藜芦多糖的提取及理化性质测定 | 第22-29页 |
| 1 材料、试剂及仪器 | 第22-23页 |
| 1.1 实验材料 | 第22页 |
| 1.2 实验试剂 | 第22页 |
| 1.3 实验仪器与设备 | 第22-23页 |
| 2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.1 藜芦多糖的提取方法 | 第23页 |
| 2.2 藜芦多糖的理化性质测定 | 第23-25页 |
| 2.2.1 总糖含量的测定方法 | 第23-24页 |
| 2.2.2 糖醛酸含量的测定方法 | 第24-25页 |
| 2.2.3 单糖组成的测定 | 第25页 |
| 3 实验结果 | 第25-28页 |
| 3.1 藜芦多糖的提取 | 第25-26页 |
| 3.2 VP的理化性质测定 | 第26-28页 |
| 3.2.1 总糖含量的测定 | 第26-27页 |
| 3.2.2 糖醛酸含量的测定 | 第27页 |
| 3.2.3 单糖组成测定 | 第27-28页 |
| 4 小结 | 第28-29页 |
| 第三章 藜芦多糖的分离纯化及结构分析 | 第29-51页 |
| 1 材料、试剂及仪器 | 第29-30页 |
| 1.1 实验材料 | 第29页 |
| 1.2 实验试剂 | 第29页 |
| 1.3 实验仪器与设备 | 第29-30页 |
| 2 实验方法 | 第30-33页 |
| 2.1 DEAE-纤维素柱层析分离藜芦多糖 | 第30-32页 |
| 2.1.1 DEAE-纤维素的处理和装柱 | 第30页 |
| 2.1.2 DEAE-纤维素吸附藜芦多糖能力的测定 | 第30-31页 |
| 2.1.3 藜芦多糖的线性梯度洗脱 | 第31页 |
| 2.1.4 藜芦多糖的分步梯度洗脱 | 第31页 |
| 2.1.5 藜芦多糖的离子交换柱层析制备 | 第31-32页 |
| 2.2 藜芦酸性糖的凝胶柱层析 | 第32-33页 |
| 2.2.1 藜芦酸性糖的凝胶过滤分析 | 第32页 |
| 2.2.2 藜芦酸性糖的凝胶过滤制备 | 第32-33页 |
| 2.3 多糖样品分子量均一性鉴定 | 第33页 |
| 2.3.1 凝胶过滤法 | 第33页 |
| 2.3.2 高效凝胶色谱法 | 第33页 |
| 2.4 结构分析方法 | 第33页 |
| 2.4.1 FT-IR分析多糖样品 | 第33页 |
| 2.4.2 NMR分析多糖样品 | 第33页 |
| 2.4.3 果胶酶酶解法分析多糖样品 | 第33页 |
| 3 实验结果 | 第33-49页 |
| 3.1 藜芦多糖的离子交换层析 | 第33-40页 |
| 3.1.1 DEAE-纤维素分离藜芦多糖能力的测定 | 第33-34页 |
| 3.1.2 VP的离子交换洗脱 | 第34-35页 |
| 3.1.3 藜芦多糖离子交换分级制备 | 第35-39页 |
| 3.1.4 VPA分级得到各级分的理化性质测定 | 第39-40页 |
| 3.2 藜芦酸性糖的凝胶过滤分级 | 第40-43页 |
| 3.2.1 藜芦酸性糖的凝胶过滤分析 | 第40-41页 |
| 3.2.2 藜芦酸性糖级分的凝胶过滤制备 | 第41-43页 |
| 3.3 纯化得到的多糖分子量均一性鉴定 | 第43-47页 |
| 3.3.1 凝胶过滤法 | 第43-45页 |
| 3.3.2 高效凝胶渗透色谱法 | 第45-47页 |
| 3.4 各个均一级分理化性质的测定 | 第47页 |
| 3.5 酸性糖的结构分析 | 第47-49页 |
| 3.5.1 红外光谱法分析多糖结构 | 第47-48页 |
| 3.5.2 ~(13)C NMR分析多糖结构 | 第48-49页 |
| 3.5.3 果胶酶酶解法分析多糖结构 | 第49页 |
| 4 小结 | 第49-51页 |
| 第四章 人参与藜芦混合提取对多糖物质的影响 | 第51-56页 |
| 1 材料、试剂及仪器设备 | 第51-52页 |
| 1.1 实验材料 | 第51页 |
| 1.2 实验试剂 | 第51页 |
| 1.3 实验仪器与设备 | 第51-52页 |
| 2 实验方法 | 第52-53页 |
| 2.1 多糖的提取方法 | 第52页 |
| 2.1.1 人参与藜芦混合提取多糖 | 第52页 |
| 2.1.2 人参与藜芦单独提取多糖 | 第52页 |
| 2.2 多糖的理化性质的测定 | 第52页 |
| 2.2.1 总糖含量的测定方法 | 第52页 |
| 2.2.2 糖醛酸含量的测定方法 | 第52页 |
| 2.2.3 单糖组成的测定 | 第52页 |
| 2.3 多糖样品的凝胶过滤分析 | 第52-53页 |
| 3 实验结果 | 第53-54页 |
| 3.1 多糖的提取 | 第53页 |
| 3.2 人参与藜芦混合提取的多糖与单独提取的多糖理化性质比较 | 第53页 |
| 3.3 人参与藜芦混合提取的多糖与单独提取的多糖的凝胶柱分析 | 第53-54页 |
| 4 小结 | 第54-56页 |
| 论文总结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
