| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 引言 | 第10-13页 |
| 第2章 材料与仪器 | 第13-16页 |
| 2.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.2 实验试剂 | 第13-15页 |
| 2.2.1 主要购置试剂 | 第13-14页 |
| 2.2.2 主要配置试剂 | 第14-15页 |
| 2.3 实验仪器 | 第15-16页 |
| 第3章 方法 | 第16-25页 |
| 3.1 实验思路 | 第16页 |
| 3.1.1 正常脑血管壁 Cx43、Cx40 的磷酸化水平 | 第16页 |
| 3.1.2 CVS 中 Cx43、Cx40 的磷酸化水平 | 第16页 |
| 3.1.3 CVS 中 Cx43、Cx40 的磷酸化位点 | 第16页 |
| 3.2 实验分组 | 第16页 |
| 3.3 ET-1 诱导的 SD 大鼠脑基底动脉血管条ＣＶＳ模型的建立 | 第16-17页 |
| 3.4 脑基底动脉血管条张力检测 | 第17页 |
| 3.4.1 实验系统连接和仪器参数设置 | 第17页 |
| 3.4.2 实验步骤 | 第17页 |
| 3.5 Western blotting技术检测正常组与CVS组中Cx43 与 Cx40磷酸化水平8 | 第17-21页 |
| 3.5.1 正常组与 CVS 组磷酸化总蛋白样品制备 | 第17-18页 |
| 3.5.2 样品蛋白含量的测定 | 第18页 |
| 3.5.3 配胶 | 第18-19页 |
| 3.5.4 灌胶和上样 | 第19页 |
| 3.5.5 垂直电泳 | 第19页 |
| 3.5.6 转膜 | 第19-20页 |
| 3.5.7 样品蛋白免疫反应 | 第20页 |
| 3.5.8 样品蛋白化学发光及曝光 | 第20页 |
| 3.5.9 膜再生 | 第20-21页 |
| 3.5.10 内参蛋白免疫反应 | 第21页 |
| 3.5.11 内参蛋白蛋白化学发光及曝光 | 第21页 |
| 3.5.12 图像分析 | 第21页 |
| 3.5.13 数据统计分析 | 第21页 |
| 3.6 CVS 中 Cx43、Cx40 磷酸化位点质谱鉴定 | 第21-25页 |
| 3.6.1 磷酸化 Cx43、Cx40 SDS 胶条的获取 | 第21-22页 |
| 3.6.2 SDS 胶内酶切 | 第22-23页 |
| 3.6.3 质谱鉴定 Cx43、Cx40 磷酸化位点 | 第23-24页 |
| 3.6.4 数据库检索 | 第24-25页 |
| 第4章 实验结果 | 第25-27页 |
| 4.1 体外脑基底动脉血管条 CVS 模型的成功建立 | 第25页 |
| 4.2 正常组与 CVS 组中 Cx43、Cx40 蛋白磷酸化水平变化 | 第25-26页 |
| 4.3 质谱鉴定 Cx43、Cx40 磷酸化位点结果 | 第26-27页 |
| 第5章 讨论 | 第27-33页 |
| 5.1 蛛网膜下腔出血（SAH）后脑血管痉挛（CVS）一般概况 | 第27-28页 |
| 5.2 缝隙连接（GJ） | 第28页 |
| 5.3 GJ 蛋白 Cx43、Cx40 磷酸化及其对 GJ 功能的影响 | 第28-30页 |
| 5.4 Cx43、Cx40 磷酸化在 CVS 中作用的研究 | 第30-32页 |
| 5.5 展望 | 第32-33页 |
| 第6章 结论 | 第33-34页 |
| 致谢 | 第34-35页 |
| 参考文献 | 第35-38页 |
| 附图 | 第38-44页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第44-45页 |
| 综述 | 第45-50页 |
| 参考文献 | 第49-50页 |
