摘要 | 第4-9页 |
ABSTRACT | 第9-14页 |
目录 | 第15-18页 |
中英文对照名词表 | 第18-20页 |
前言 | 第20-24页 |
第一章 氟非尼酮对UUO大鼠肾间质纤维化及脂质过氧化损伤的影响 | 第24-52页 |
1.1 前言 | 第24-25页 |
1.2 材料和方法 | 第25-37页 |
1.2.1 研究对象 | 第25页 |
1.2.2 主要实验仪器及设备 | 第25页 |
1.2.3 主要实验试剂及耗材 | 第25-27页 |
1.2.4 实验方法 | 第27-37页 |
1.3 统计学分析 | 第37-38页 |
1.4 结果 | 第38-47页 |
1.4.1 UUO术后14天各组大鼠梗阻侧肾脏组织形态学改变 | 第38页 |
1.4.2 肾间质损伤指数评分 | 第38-41页 |
1.4.3 免疫组化学染色检测UUO术后14天各组大鼠梗阻侧肾脏Ⅰ、Ⅲ胶原表达 | 第41-43页 |
1.4.4 Western blot检测各组大鼠梗阻侧肾脏纤连蛋白(FN)的表达 | 第43-44页 |
1.4.5 硫代巴比妥酸法检测各组大鼠梗阻侧肾脏MDA表达水平 | 第44-45页 |
1.4.6 ELISA法检测各组大鼠梗阻侧肾脏8-iso-PGF2a表达水平 | 第45-47页 |
1.5 讨论 | 第47-50页 |
1.6 结论 | 第50-52页 |
第二章 氟非尼酮对UUO大鼠肾脏氧化应激反应及磷酸化Akt的影响 | 第52-65页 |
2.1 前言 | 第52-53页 |
2.2 材料和方法 | 第53-57页 |
2.2.1 研究对象 | 第53页 |
2.2.2 主要实验仪器及设备 | 第53-54页 |
2.2.3 主要实验试剂及耗材 | 第54页 |
2.2.4 实验方法 | 第54-57页 |
2.3 统计学分析 | 第57-58页 |
2.4 实验结果 | 第58-61页 |
2.4.1 各组大鼠梗阻侧肾脏NADPH氧化酶活性 | 第58-59页 |
2.4.2 Western blot检测各组大鼠梗阻侧肾脏NADPH氧化酶Nox1、Nox2蛋白表达水平 | 第59-60页 |
2.4.3 Western blot检测各组大鼠梗阻侧肾脏磷酸化Akt蛋白的表达 | 第60-61页 |
2.5 讨论 | 第61-64页 |
2.6 结论 | 第64-65页 |
第三章 AKF-PD对AngⅡ诱导NRK-52E细胞内氧化应激反应及磷酸化ERK、Akt的影响 | 第65-85页 |
3.1 前言 | 第65页 |
3.2 材料与方法 | 第65-73页 |
3.2.1 研究对象 | 第65-66页 |
3.2.2 主要试剂 | 第66-67页 |
3.2.3 主要仪器 | 第67-68页 |
3.2.4 实验方法 | 第68-73页 |
3.3 统计学处理 | 第73-74页 |
3.4 实验结果 | 第74-80页 |
3.4.1 AKF-PD对AngⅡ诱导细胞内ROS产生的影响 | 第74-76页 |
3.4.2 AKF-PD对AngⅡ诱导NRK-52E细胞NADPH氧化酶亚单位Nox1、Nox2蛋白质表达 | 第76页 |
3.4.3 AKF-PD对AngⅡ诱导NRK-52E细胞Ⅰ型胶原蛋白质表达 | 第76-77页 |
3.4.4 AKF-PD对AngⅡ诱导NRK-52E细胞ERK磷酸化的影响 | 第77-78页 |
3.4.5 AKF-PD对AngⅡ诱导NRK-52E细胞Akt磷酸化的影响 | 第78-80页 |
3.5 讨论 | 第80-84页 |
3.6 结论 | 第84-85页 |
第四章 AKF-PD对氧化应激反应中PI3K/Akt及MEK/ERK信号通路的影响 | 第85-103页 |
4.1 前言 | 第85页 |
4.2 材料与方法 | 第85-92页 |
4.2.1 研究对象 | 第85-86页 |
4.2.2 主要实验仪器与设备 | 第86-87页 |
4.2.3 主要实验试剂及耗材 | 第87-88页 |
4.2.4 实验方法 | 第88-90页 |
4.2.5 细胞处理 | 第90-92页 |
4.3 实验结果 | 第92-99页 |
4.3.1 过表达MEK1Q56P对NRK-52E细胞的影响 | 第92-96页 |
4.3.2 过表达PI3K P110α-CAAX对NRK-52E细胞的影响 | 第96-99页 |
4.4 讨论 | 第99-102页 |
4.5 结论 | 第102-103页 |
全文总结 | 第103-104页 |
参考文献 | 第104-111页 |
综述 | 第111-128页 |
参考文献 | 第121-128页 |
攻读学位期间的主要研究成果 | 第128-130页 |
致谢 | 第130页 |