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生物素化脂质体促进胰岛素口服吸收的研究

中文摘要第8-10页
ABSTRACT第10-12页
前言第13-18页
第一章 Biotin-DSPE的合成与结构鉴定第18-24页
    1 材料与仪器第18-19页
        1.1 药品与试剂第18页
        1.2 仪器及设备第18-19页
    2 试验方法第19-20页
        2.1 Biotin-DSPE的合成第19-20页
            2.1.1 Biotin-DSPE的分离纯化第19-20页
            2.1.2 Biotin-DSPE的定性和结构鉴别第20页
    3 结果与讨论第20-23页
        3.1 Biotin-DSPE的合成第20页
        3.2 Biotin-DSPE的FTIR第20-21页
        3.3 Biotin-DSPE的~1H NMR第21-22页
        3.4 Biotin-DSPE的TLC第22-23页
    本章小结第23-24页
第二章 胰岛素生物素化脂质体的制备与表征第24-48页
    1 材料与仪器第24-25页
        1.1 药品与试剂第24-25页
        1.2 仪器及设备第25页
        1.3 实验动物第25页
    2 实验方法第25-31页
        2.1 胰岛素HPLC分析方法的建立第25-26页
            2.1.1 色谱条件第25-26页
            2.1.2 标准曲线第26页
            2.1.3 精密度第26页
            2.1.4 准确度第26页
            2.1.5 专属性第26页
        2.2 载胰岛素生物素化脂质体的制备与表征第26-28页
            2.2.1 载胰岛素脂质体的制备第26-27页
            2.2.2 粒径的测定第27页
            2.2.3 包封率的测定第27-28页
            2.2.4 脂质体处方优化第28页
            2.2.5 脂质体粒径第28页
            2.2.6 脂质体形态第28页
        2.3 胰岛素的构象和生物活性第28-30页
            2.3.1 制备条件对胰岛素二级构象的影响第29-30页
            2.3.2 制备条件对胰岛素生物活性的影响第30页
        2.4 Biotin-DSPE用量对脂质体相变温度的影响第30-31页
        2.5 脂质体体外稳定性第31页
        2.6 脂质体贮存稳定性第31页
    3 结果与讨论第31-47页
        3.1 胰岛素测定HPLC方法第31-33页
            3.1.1 标准曲线第31页
            3.1.2 精密度第31-32页
            3.1.3 准确度第32页
            3.1.4 专属性第32-33页
        3.2 胰岛素脂质体的制备第33-40页
            3.2.1 包封率的测定第33-34页
            3.2.2 脂质体处方单因素考察第34-37页
            3.2.3 脂质体粒径及形态第37-38页
            3.2.4 脂质体的制备第38-40页
        3.3 胰岛素在脂质体中的构象和生物活性第40-44页
            3.3.1 脂质体中胰岛素的二级构象第41-43页
            3.3.2 脂质体中胰岛素的生物活性第43-44页
        3.4 Biotin-DSPE用量对脂质体相变温度的影响第44-45页
        3.5 增强的脂质体体外稳定性第45-46页
        3.6 脂质体贮存稳定性第46-47页
    本章小结第47-48页
第三章 生物素化脂质体体内药效学和药动学研究第48-62页
    1 材料与仪器第48-49页
        1.1 药品与试剂第48页
        1.2 仪器及设备第48-49页
        1.3 实验动物第49页
    2 实验方法第49-52页
        2.1 胰岛素脂质体的制备第49页
        2.2 正常大鼠口服给药降血糖效应研究第49-50页
            2.2.1 血糖的测定第49-50页
            2.2.2 脂质体口服降血糖效应研究第50页
        2.3 糖尿病大鼠口服给药降血糖效应和生物利用度研究第50-51页
        2.4 统计分析第51-52页
    3 结果与讨论第52-61页
        3.1 脂质体粒径和包封率第52页
        3.2 正常大鼠口服胰岛素制剂的降血糖效应第52-57页
            3.2.1 脂质体粒径对降血糖效应的影响第53-55页
            3.2.2 配体比例对降血糖效应的影响第55-56页
            3.2.3 剂量对降血糖效应的影响第56-57页
        3.3 糖尿病大鼠口服胰岛素制剂的降血糖效应和生物利用度第57-61页
            3.3.1 糖尿病大鼠的口服降血糖效应第57-58页
            3.3.2 糖尿病大鼠口服给药后的生物利用度第58-61页
    本章小结第61-62页
第四章 胰岛素生物素化脂质体口服吸收机制研究第62-101页
    1 材料与仪器第62-64页
        1.1 药品和试剂第62-63页
        1.2 细胞第63-64页
        1.3 仪器及设备第64页
        1.4 实验动物第64页
    2 实验方法第64-73页
        2.1 免疫荧光配体的合成第64-66页
            2.1.1 生物素-N-5-氨基荧光素的分离和纯化第65页
            2.1.2 生物素-N-5-氨基荧光素的定性和结构鉴别第65-66页
        2.2 胃肠道生物素受体表达第66页
            2.2.1 细胞培养第66页
            2.2.2 生物素受体表达测定第66页
        2.3 跨膜转运研究第66-68页
            2.3.1 上皮细胞层模型的构建第66-67页
            2.3.2 转运实验第67-68页
            2.3.3 TEER值的测定第68页
            2.3.4 脂质体对细胞紧密连接的影响第68页
        2.4 细胞摄取研究第68-70页
            2.4.1 FITC-ins的合成第68-69页
            2.4.2 细胞摄取第69-70页
        2.5 脂质体的内化机制探讨第70-71页
            2.5.1 罗丹明标记胆固醇的合成第70页
            2.5.2 脂质体内化的CLSM观察第70-71页
        2.6 生物素化脂质体的内吞途径第71页
        2.7 生物素化脂质体的细胞内转运机制研究第71-72页
        2.8 脂质体胃肠道转运的离体成像研究第72页
        2.9 脂质体跨上皮吸收观察第72-73页
    3 结果与讨论第73-100页
        3.1 生物素-N-5-氨基荧光素的合成第73-76页
        3.2 生物素受体表达第76-77页
        3.3 脂质体的跨膜转运第77-81页
            3.3.1 Caco-2细胞模型转运第77-78页
            3.3.2 M细胞模型转运第78-79页
            3.3.3 脂质体对Caco-2细胞单层TEER的影响第79-80页
            3.3.4 脂质体对细胞紧密连接的影响第80-81页
        3.4 脂质体的细胞摄取第81-88页
            3.4.1 FITC-ins的合成和性质第81-82页
            3.4.2 细胞摄取第82-84页
            3.4.3 温度对摄取的影响第84-86页
            3.4.4 摄取的竞争性第86-88页
        3.5 脂质体内化形式第88-92页
            3.5.1 Rhodamine-CH的合成及性质第88-91页
            3.5.2 脂质体入胞观察第91-92页
        3.6 生物素化脂质体细胞内吞途径第92-95页
        3.7 生物素化脂质体的细胞内转运第95-97页
        3.8 脂质体胃肠道转运的离体成像第97-98页
        3.9 脂质体跨上皮吸收第98-100页
    本章小结第100-101页
第五章 胰岛素生物素化脂质体口服安全性的评价第101-109页
    1 材料与仪器第101-102页
        1.1 药品与试剂第101-102页
        1.2 细胞第102页
        1.3 仪器第102页
    2 实验方法第102-104页
        2.1 脂质体对细胞活力的影响第102-103页
            2.1.1 Caco-2细胞培养第102-103页
            2.1.2 MTT法测定细胞存活率第103页
        2.2 脂质体对细胞凋亡的影响第103-104页
            2.2.1 凋亡诱导第103页
            2.2.2 Annexin V FITC/PI法凋亡检测第103-104页
    3 结果与讨论第104-108页
        3.1 生物素化脂质体对细胞活力的影响第104页
        3.2 生物素化脂质体对细胞凋亡的影响第104-108页
            3.2.1 脂质体4h时对细胞凋亡的影响第106-107页
            3.2.2 脂质体24h时对细胞凋亡的影响第107-108页
    本章小结第108-109页
全文总结第109-111页
英文缩写注释第111-112页
参考文献第112-121页
致谢第121-122页
拟发表论文第122-123页

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