| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 1 前言 | 第8-17页 |
| 1.1 文献综述 | 第8-16页 |
| 1.1.1 植物花香研究进展 | 第8-10页 |
| 1.1.2 蜡梅花香成分研究进展 | 第10-12页 |
| 1.1.3 MYB类转录因子 | 第12-14页 |
| 1.1.4 ODORANT1基因的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.2 研究的目的、意义及内容 | 第16-17页 |
| 2 蜡梅ODORANT1基因的克隆与序列分析 | 第17-33页 |
| 2.1 前言 | 第17页 |
| 2.2 材料与方法 | 第17-22页 |
| 2.2.1 实验所用生物材料,软件,实验试剂、药品和实验仪器 | 第17-18页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第18-22页 |
| 2.3 结果与分析 | 第22-31页 |
| 2.3.1 H29蜡梅花的RNA质量检测 | 第22-23页 |
| 2.3.2 CpODO1和CpODO2基因cDNA全长的生物信息学分析 | 第23-30页 |
| 2.3.3 CpODO1和CpODO2基因开放阅读框片段的克隆 | 第30-31页 |
| 2.4 讨论 | 第31-33页 |
| 2.4.1 CpODO1和CpODO2基因的序列特征 | 第31-32页 |
| 2.4.2 CpODO1和CpODO2基因ORF区片段的克隆 | 第32-33页 |
| 3 蜡梅CpODO1基因转化拟南芥的研究 | 第33-41页 |
| 3.1 前言 | 第33页 |
| 3.2 实验材料,试剂、药品和仪器 | 第33-34页 |
| 3.3 实验方法 | 第34-38页 |
| 3.3.1 CpODO1基因植物双元表达载体构建 | 第34-36页 |
| 3.3.2 目的片段连接表达载体的质粒电转农杆菌 | 第36-37页 |
| 3.3.3 农杆菌介导转化拟南芥 | 第37页 |
| 3.3.4 拟南芥T0代种子的筛选 | 第37-38页 |
| 3.4 结果与分析 | 第38-39页 |
| 3.4.1 蜡梅CpODO1基因植物双元表达载体的构建 | 第38-39页 |
| 3.4.3 转基因拟南芥T0代种子的筛选 | 第39页 |
| 3.5 讨论 | 第39-41页 |
| 3.5.1 双元表达载体的构建 | 第39-40页 |
| 3.5.2 拟南芥转基因植株的检测 | 第40-41页 |
| 4 蜡梅CpODO1基因转化烟草的研究 | 第41-46页 |
| 4.1 前言 | 第41页 |
| 4.2 实验材料,试剂、药品和仪器 | 第41页 |
| 4.3 实验方法 | 第41-43页 |
| 4.3.1 目的片段连接表达载体的质粒电转农杆菌 | 第41页 |
| 4.3.2 农杆菌介导转化烟草 | 第41-42页 |
| 4.3.3 转基因烟草的鉴定 | 第42-43页 |
| 4.4 结果与分析 | 第43-44页 |
| 4.4.1 农杆菌EHA105转化烟草 | 第43-44页 |
| 4.4.2 转基因烟草的PCR鉴定 | 第44页 |
| 4.5 讨论 | 第44-46页 |
| 4.5.1 叶盘法转化烟草 | 第44-45页 |
| 4.5.2 转基因植株的PCR检测 | 第45-46页 |
| 5 蜡梅CpODO1和CpODO2基因的时空表达检测 | 第46-51页 |
| 5.1 前言 | 第46页 |
| 5.2 实验试剂、仪器与方法 | 第46-48页 |
| 5.2.1 实验试剂与仪器 | 第46页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第46-48页 |
| 5.3 结果与分析 | 第48-49页 |
| 5.3.1 提取蜡梅样本的RNA | 第48页 |
| 5.3.2 qPCR实验结果 | 第48-49页 |
| 5.4 讨论 | 第49-51页 |
| 5.4.1 qPCR的准备工作 | 第49-50页 |
| 5.4.2 CpODO1和CpODO2基因的表达情况分析 | 第50-51页 |
| 6 研究展望 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
