| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-24页 |
| 1.1 脑出血的病理机制 | 第14-17页 |
| 1.1.1 原发性损伤 | 第14页 |
| 1.1.2 继发性损伤 | 第14-17页 |
| 1.2 脑出血模型方法 | 第17-19页 |
| 1.2.1 自体血注入法 | 第17-18页 |
| 1.2.2 胶原酶诱导法 | 第18-19页 |
| 1.3 HMGB1 的研究进展 | 第19-24页 |
| 1.3.1 基因结构和组织分布 | 第19页 |
| 1.3.2 HMGB1 的分泌 | 第19-20页 |
| 1.3.3 HMGB1 受体和细胞内信号传导 | 第20-21页 |
| 1.3.4 HMGB1 激活体外系统的炎症 | 第21-22页 |
| 1.3.5 HMGB1 与中枢神经系统的疾病 | 第22-24页 |
| 第2章 材料与方法 | 第24-36页 |
| 2.1 实验试剂 | 第24-26页 |
| 2.2 实验仪器 | 第26-27页 |
| 2.3 实验试剂配制 | 第27-28页 |
| 2.4 实验动物 | 第28页 |
| 2.5 实验方法 | 第28-36页 |
| 2.5.1 大鼠 ICH 模型的制备 | 第28-29页 |
| 2.5.2 动物分组 | 第29-30页 |
| 2.5.3 大鼠 ICH 后脑血肿的测定 | 第30页 |
| 2.5.4 大鼠 ICH 后 Western blotting 分析脑匀浆 HMGB1 表达水平 | 第30-31页 |
| 2.5.5 大鼠 ICH 后 ELISA 分析血浆 HMGB1 水平 | 第31-32页 |
| 2.5.6 大鼠 ICH 后血脑屏障通透性分析 | 第32-33页 |
| 2.5.7 大鼠 ICH 后脑含水量测定 | 第33页 |
| 2.5.8 大鼠 ICH 后 HE 染色 | 第33-34页 |
| 2.5.9 大鼠 ICH 后脑免疫荧光染色观察 HMGB1 和 Ibal | 第34-35页 |
| 2.5.10 统计分析 | 第35-36页 |
| 第3章 实验结果 | 第36-45页 |
| 3.1 大鼠 ICH 模型的建立 | 第36页 |
| 3.2 大鼠 ICH 后血肿体积变化 | 第36-37页 |
| 3.3 大鼠 ICH 后脑内 HMGB1 水平的变化 | 第37-38页 |
| 3.4 大鼠 ICH 后血浆 HMGB1 水平的变化 | 第38-39页 |
| 3.5 大鼠 ICH 后血脑屏障通透性变化 | 第39-40页 |
| 3.6 大鼠 ICH 后脑含水量变化 | 第40-41页 |
| 3.7 大鼠 ICH 后 HE 染色 | 第41-42页 |
| 3.8 大鼠 ICH 后免疫荧光染色 | 第42-45页 |
| 第4章 讨论 | 第45-49页 |
| 第5章 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-59页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
