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兔尿源性干细胞复合小肠粘膜下层脱细胞基质构建组织工程尿道的研究

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
引言第9-11页
第一章 兔USCs原代培养与诱导分化第11-31页
    1.1 兔尿液的收集及USCs的分离培养第11-13页
        1.1.1 材料第11-12页
        1.1.2 实验方法第12-13页
    1.2 兔USCs生长曲线的测定第13-14页
        1.2.1 材料第13-14页
        1.2.2 实验方法第14页
    1.3 兔USCs体外向上皮细胞(UCs)和平滑肌细胞(SMCs)方向诱导第14-17页
        1.3.1 材料第14-15页
        1.3.2 实验方法第15-17页
    1.4 USCs诱导分化细胞的鉴定第17-23页
        1.4.1 材料第17-19页
        1.4.2 实验方法第19-23页
    1.5 实验结果第23-29页
        1.5.1 兔尿液的收集及USCs的分离培养第23-26页
        1.5.2 兔尿源性干细胞生长曲线第26页
        1.5.3 兔尿源性干细胞多潜能分化(上皮分化和平滑肌分化)第26-27页
        1.5.4 兔USCs诱导分化的细胞鉴定第27-29页
    1.6 讨论第29-31页
        1.6.1 兔尿源形干细胞(USCs)第29页
        1.6.2 尿源性干细胞诱导分化为上皮细胞和平滑肌细胞第29-31页
第二章 小肠粘膜下层脱细胞基质(SIS)的制备与检测第31-46页
    2.1 小肠粘膜下层脱细胞基质(SIS)的制备第31页
        2.1.1 材料第31页
        2.1.2 实验方法第31页
    2.2 SIS电镜扫描观察第31-32页
    2.3 SIS的HE检测第32-33页
        2.3.1 材料第32页
        2.3.2 实验方法第32-33页
    2.4 SIS的Hoechst染色第33-34页
        2.4.1 材料第33页
        2.4.2 实验方法第33-34页
    2.5 经不同浓度PAA氧化脱细胞处理的SIS单轴力学拉伸实验测定第34-35页
        2.5.1 材料第34页
        2.5.2 实验方法第34-35页
    2.6 经不同浓度PAA处理的SIS的残余DNA量测定第35-36页
        2.6.1 材料第35页
        2.6.2 实验方法第35-36页
    2.7 经不同浓度PAA处理的SIS的生长因子TGF-β、VEGF的残余量测定第36-37页
        2.7.1 材料第36页
        2.7.2 实验方法第36-37页
    2.8 SIS的细胞毒性研究第37-38页
        2.8.1 材料第37页
        2.8.2 实验方法第37-38页
    2.9 统计学方法第38-39页
    2.10 实验结果第39-43页
        2.10.1 SIS的大体标本观察第39页
        2.10.2 SIS电镜扫描观察第39页
        2.10.3 SIS的组织学检查(HE染色和Hoechst染色)第39-40页
        2.10.4 经不同浓度PAA氧化脱细胞处理的SIS单轴力学拉伸测定结果第40-41页
        2.10.5 经不同浓度PAA处理的SIS的残余DNA量测定结果第41-42页
        2.10.6 经不同PAA浓度处理的SIS中的生长因子TGF-β、VEGF的残余量测定结果第42-43页
        2.10.7 USCs在SIS上的黏附实验研究第43页
    2.11 讨论第43-46页
第三章 初级组织工程尿道的体外构建第46-53页
    3.1 初级组织工程尿道的体外构建第46-50页
        3.1.1 材料第46-47页
        3.1.2 实验方法第47-50页
    3.2 实验结果第50-51页
        3.2.1 复合支架的HE检测和Hoechst染色第50-51页
        3.2.2 初级组织工程尿道的Masson三色染色和Hoechst染色第51页
    3.3 讨论第51-53页
结语第53-54页
参考文献第54-59页
附录第59-60页
在校期间发表论文情况第60-61页
致谢第61-62页
统计学审核证明第62页

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