| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-12页 |
| 第2章 材料与方法 | 第12-24页 |
| 2.1 实验所需材料 | 第12-16页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第12页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第12-13页 |
| 2.1.3 主要设备 | 第13-14页 |
| 2.1.4 主要试剂配制 | 第14-16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-24页 |
| 2.2.1 UBC9在肝癌细胞的表达 | 第16-18页 |
| 2.2.2 shRNA设计、实验分组及细胞转染 | 第18-20页 |
| 2.2.3 qRT-PCR、Western Blot分别检测转染后各组UBC9 mRNA和蛋白水平的表达。 | 第20-22页 |
| 2.2.4 CCK8法检测定UBC9对肝癌细胞的增殖作用 | 第22页 |
| 2.2.5 流式细胞仪检测各组细胞的凋亡率 | 第22页 |
| 2.2.6 沉默UBC9对NF-κB p65蛋白及Bcl-2 蛋白表达的影响 | 第22-23页 |
| 2.2.7 统计学方法 | 第23-24页 |
| 第3章 实验结果 | 第24-30页 |
| 3.1 UBC9在5种不同肝癌细胞株中的表达 | 第24页 |
| 3.2 转染shRNA后UBC9在HepG2中mRNA及蛋白水平都下调 | 第24-26页 |
| 3.2.1 转染效果 | 第24-25页 |
| 3.2.2 转染shRNA后UBC9在HepG2中mRNA水平下调 | 第25页 |
| 3.2.3 转染shRNA后UBC在HepG2中蛋白水平下调 | 第25-26页 |
| 3.3 下调UBC9能够抑制HepG2细胞增殖能力 | 第26-27页 |
| 3.4 下调UBC9能够促进HepG2细胞凋亡 | 第27-28页 |
| 3.5 下调UBC9对HepG2细胞中凋亡蛋白Bcl-2 影响 | 第28页 |
| 3.6 下调UBC9对HepG2细胞中NF-κB p65的影响 | 第28-30页 |
| 第4章 讨论 | 第30-32页 |
| 第5章 结论与展望 | 第32-33页 |
| 5.1 结论 | 第32页 |
| 5.2 展望 | 第32-33页 |
| 致谢 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-36页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第36-37页 |
| 综述 | 第37-46页 |
| 参考文献 | 第44-46页 |
