| 致谢 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 缩略词表 | 第13-17页 |
| 1. 前言 | 第17-19页 |
| 2. 材料 | 第19-24页 |
| 2.1 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.2 主要仪器设备 | 第20页 |
| 2.3 质粒和细胞系 | 第20页 |
| 2.4 实验动物 | 第20页 |
| 2.5 常用试剂的配制 | 第20-22页 |
| 2.6 常用引物的稀释 | 第22-24页 |
| 3. 方法 | 第24-36页 |
| 3.1 细胞培养 | 第24页 |
| 3.2 TAM的提纯和分离 | 第24-25页 |
| 3.3 小鼠腹腔巨噬细胞的提取 | 第25页 |
| 3.4 肺癌条件性培养基(LLC conditioned medium,LCM)的制备 | 第25-26页 |
| 3.5 细胞总RNA的提取、反转录及定量PCR | 第26-27页 |
| 3.6 蛋白提取、定量及western blot | 第27-28页 |
| 3.7 转染 | 第28页 |
| 3.8 pGL3 HIF-1α启动子质粒构建 | 第28-29页 |
| 3.9 双荧光素酶报告基因 | 第29-30页 |
| 3.10 抑制剂处理 | 第30页 |
| 3.11 免疫荧光及免疫组化 | 第30-32页 |
| 3.12 流式细胞检测 | 第32页 |
| 3.13 ATP及乳酸含量检测 | 第32-33页 |
| 3.14 动物实验 | 第33-35页 |
| 3.15 统计学处理 | 第35-36页 |
| 4. 结果 | 第36-59页 |
| 4.1 TLR4高表达于肺癌相关巨噬细胞 | 第36-37页 |
| 4.2 TLR4调控肺癌相关巨噬细胞极性转化 | 第37-42页 |
| 4.3 TLR4通过作用于细胞代谢影响肺癌相关巨噬细胞的极化 | 第42-49页 |
| 4.4 TLR4通过影响AKT-mTOR-HIF-1α的表达抑制M1型极化 | 第49-51页 |
| 4.5 干扰肺癌相关巨噬细胞TLR4的表达抑制肺癌细胞的生长 | 第51-54页 |
| 4.6 干扰肺癌相关巨噬细胞TLR4的表达抑制肺癌细胞的迁移与侵袭 | 第54页 |
| 4.7 HIF-1α是Bcl-6的功能靶基因 | 第54-59页 |
| 5. 讨论 | 第59-62页 |
| 参考文献 | 第62-65页 |
| 综述 | 第65-75页 |
| 參考文献 | 第72-75页 |
| 作者简介 | 第75页 |
