| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-31页 |
| 1.1 引言 | 第11-15页 |
| 1.2 荧光二氧化硅纳米粒子的物理化学性质 | 第15-20页 |
| 1.2.1 荧光物质的发光机理 | 第15-16页 |
| 1.2.2 荧光的激发光谱和发射光谱 | 第16页 |
| 1.2.3 斯托克斯位移 | 第16-17页 |
| 1.2.4 荧光量子产率 | 第17页 |
| 1.2.5 荧光与分子结构的关系 | 第17-18页 |
| 1.2.6 荧光共振能量转移(FRET) | 第18-19页 |
| 1.2.7 荧光的猝灭 | 第19页 |
| 1.2.8 荧光二氧化硅纳米粒子的形貌、表面性质以及发光性能 | 第19-20页 |
| 1.3 荧光二氧化硅纳米粒子在生物医学领域的应用 | 第20-26页 |
| 1.3.1 荧光二氧化硅纳米粒子用于免疫组化的研究 | 第21-22页 |
| 1.3.2 荧光二氧化硅纳米粒子用于细胞成像的研究 | 第22-23页 |
| 1.3.3 荧光二氧化硅纳米粒子用于DNA 片段的特异性识别的研究 | 第23-24页 |
| 1.3.4 荧光二氧化硅纳米粒子用于检测环境酸度的研究 | 第24-25页 |
| 1.3.5 荧光二氧化硅纳米粒子用于检测金属离子的研究 | 第25页 |
| 1.3.6 荧光二氧化硅纳米粒子在其它领域中的应用 | 第25-26页 |
| 1.4 荧光二氧化硅纳米粒子的制备 | 第26-29页 |
| 1.4.1 St(o|¨)ber 合成法（St(o|¨)ber Method） | 第26页 |
| 1.4.2 反向微乳液法（ Reverse Microemulsion Method） | 第26-29页 |
| 1.5 本文工作内容 | 第29-31页 |
| 第二章 荧光二氧化硅纳米粒子的制备 | 第31-64页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验设备与试剂 | 第31-32页 |
| 2.3 实验方法 | 第32-36页 |
| 2.3.1 合成荧光二氧化硅纳米粒子 | 第32-33页 |
| 2.3.2 透射电子显微镜分析(TEM﹑HRTEM) | 第33-34页 |
| 2.3.3 能量色散光谱分析(EDX) | 第34页 |
| 2.3.4 原子力显微镜分析(AFM) | 第34页 |
| 2.3.5 X-射线光电子能谱分析(XPS) | 第34-35页 |
| 2.3.6 紫外吸收光谱分析(UV) | 第35页 |
| 2.3.7 荧光光谱分析(Fluorescence) | 第35页 |
| 2.3.8 比表面积及孔径分析(BET) | 第35-36页 |
| 2.3.9 表面zeta 电位分析(Zeta-Potential) | 第36页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第36-63页 |
| 2.4.1 场发射透射电镜表征二氧化硅纳米粒子的形成 | 第36-44页 |
| 2.4.2 水与表面活性剂的摩尔比对二氧化硅纳米颗粒粒径的影响 | 第44-47页 |
| 2.4.3 反相微乳液稳定时间对二氧化硅纳米粒子的影响 | 第47-53页 |
| 2.4.4 二氧化硅纳米粒子与包裹染料的二氧化硅纳米粒子的对比 | 第53-58页 |
| 2.4.5 荧光染料包裹量对FSNPs 荧光强度的影响 | 第58-60页 |
| 2.4.6 染料在二氧化硅颗粒中的稳定性的研究 | 第60-63页 |
| 2.5 本章小结 | 第63-64页 |
| 第三章 荧光二氧化硅纳米粒子的表面化学修饰 | 第64-84页 |
| 3.1 引言 | 第64-65页 |
| 3.2 实验设备与试剂 | 第65页 |
| 3.3 实验方法 | 第65-68页 |
| 3.3.1 表面氨基和巯基修饰的纳米粒子的制备 | 第65-67页 |
| 3.3.2 红外光谱分析(FT-IR) | 第67页 |
| 3.3.3 荧光显微镜分析(Fluorescent Microscopy) | 第67页 |
| 3.3.4 倒置激光共聚焦荧光显微镜成像分析(Confocal) | 第67-68页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第68-82页 |
| 3.4.1 “一步法”氨基和巯基修饰的荧光二氧化硅纳米粒子 | 第68-69页 |
| 3.4.2 “两步法”氨基修饰的荧光二氧化硅纳米粒子 | 第69-72页 |
| 3.4.3 红外光谱（FT-IR）表征 | 第72页 |
| 3.4.4 原子力显微镜（AFM）和荧光显微镜表征 | 第72-75页 |
| 3.4.5 pH 值对氨基修饰的荧光纳米颗粒分散性的影响 | 第75-78页 |
| 3.4.6 鼠尾草酸连接二氧化硅纳米颗粒的研究 | 第78-82页 |
| 3.5 本章小结 | 第82-84页 |
| 第四章 荧光二氧化硅纳米粒子用于间充质干细胞成像的研究 | 第84-96页 |
| 4.1 引言 | 第84-85页 |
| 4.2 研究背景 | 第85-88页 |
| 4.2.1 间充质干细胞简介 | 第85页 |
| 4.2.2 MSCs 的生物学特性 | 第85-86页 |
| 4.2.3 CD 44 表面抗原 | 第86页 |
| 4.2.4 黏着斑激酶(focal adhesion kinase，FAK)的研究 | 第86-88页 |
| 4.3 实验设备与试剂 | 第88页 |
| 4.4 实验方法 | 第88-89页 |
| 4.4.1 纳米颗粒与抗体的连接 | 第88页 |
| 4.4.2 MSCs 的分离与培养 | 第88-89页 |
| 4.4.3 免疫组化实验步骤 | 第89页 |
| 4.4.4 表征 | 第89页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第89-94页 |
| 4.5.1 荧光纳米粒子标记CD44 抗原观察人脐带血中间充质干细胞 | 第89-91页 |
| 4.5.2 荧光二氧化硅纳米颗粒探针识别胞浆表达蛋白FAK | 第91-94页 |
| 4.6 本章小结 | 第94-96页 |
| 第五章 应用FSNPs 及PCR 法检测肉类的来源 | 第96-112页 |
| 5.1 引言 | 第96页 |
| 5.2 研究背景 | 第96-98页 |
| 5.3 实验设备与试剂 | 第98-100页 |
| 5.3.1 实验设备 | 第98-99页 |
| 5.3.2 实验所用试剂 | 第99页 |
| 5.3.3 待检测样品 | 第99页 |
| 5.3.4 PCR 引物 | 第99-100页 |
| 5.4 实验方法 | 第100-101页 |
| 5.4.1 表征方法 | 第100页 |
| 5.4.2 纳米粒子的制备以及表面的氨基修饰 | 第100页 |
| 5.4.3 戊二醛法连接抗体 | 第100页 |
| 5.4.4 高碘酸钠法连接抗体 | 第100页 |
| 5.4.5 纳米探针用于检测 | 第100-101页 |
| 5.4.6 样品中DNA 的提取 | 第101页 |
| 5.4.7 PCR 实验 | 第101页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第101-110页 |
| 5.5.1 纳米粒子连接抗体蛋白的方法对比 | 第101-103页 |
| 5.5.2 纳米探针的灵敏度测试 | 第103-104页 |
| 5.5.3 纳米探针浓度对检测效果的影响 | 第104页 |
| 5.5.4 纳米探针对羊肉的检测 | 第104-107页 |
| 5.5.5 纳米探针对鸡肉的检测 | 第107页 |
| 5.5.6 PCR 法引物特异性检测 | 第107-109页 |
| 5.5.7 PCR 法随机检测市场熟肉制品的结果 | 第109-110页 |
| 5.6 本章小结 | 第110-112页 |
| 第六章 总结与展望 | 第112-115页 |
| 6.1 全文总结 | 第112-113页 |
| 6.2 创新点 | 第113-114页 |
| 6.3 工作展望 | 第114-115页 |
| 参考文献 | 第115-128页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第128-129页 |
| 致谢 | 第129页 |
