| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩写及中英文对照表 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-17页 |
| 1.1 谷胱甘肽转移酶的研究进展 | 第11-12页 |
| 1.2 低氧胁迫对植物生长发育的影响 | 第12-13页 |
| 1.3 植物中 GABA 与植物抗逆境的关系 | 第13-14页 |
| 1.4 实时荧光定量 PCR（Real-time qPCR）技术 | 第14-16页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第16-17页 |
| 2 甜瓜幼苗 CmGST 基因氨基酸序列结构功能分析 | 第17-28页 |
| 2.1 材料与方法 | 第17页 |
| 2.1.1 材料培养 | 第17页 |
| 2.1.2 试验设计 | 第17页 |
| 2.2 测定项目与测定方法 | 第17-20页 |
| 2.2.1 甜瓜幼苗总 RNA 的提取 | 第17-18页 |
| 2.2.2 甜瓜幼苗 cDNA 的合成 | 第18-19页 |
| 2.2.3 PCR 引物设计及筛选 | 第19-20页 |
| 2.2.4 甜瓜幼苗 CmGST 氨基酸序列生物信息学分析 | 第20页 |
| 2.3 结果与分析 | 第20-27页 |
| 2.3.1 甜瓜 CmGST 总 RNA 的提取 | 第20页 |
| 2.3.2 甜瓜 CmGST 生物信息学分析 | 第20-27页 |
| 2.3.2.1 CmGST 中间片段的获得 | 第20-21页 |
| 2.3.2.2 CmGST 氨基酸序列开放阅读框及同源性、聚类性分析 | 第21-24页 |
| 2.3.2.3 CmGST 编码区序列结构域预测与分析 | 第24页 |
| 2.3.2.4 CmGST 信号肽的预测与分析 | 第24页 |
| 2.3.2.5 CmGST 氨基酸序列疏水性/亲水性预测与分析 | 第24-25页 |
| 2.3.2.6 CmGST 跨膜结构域的分析 | 第25页 |
| 2.3.2.7 CmGST 蛋白细胞定位分析 | 第25-26页 |
| 2.3.2.8 CmGST 蛋白结构分析 | 第26-27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-28页 |
| 3 外源 GABA 对低氧胁迫下 CmGST 及多胺代谢酶差异表达研究 | 第28-40页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28页 |
| 3.1.1 材料培养 | 第28页 |
| 3.1.2 试验设计 | 第28页 |
| 3.2 测定项目与测定方法 | 第28-30页 |
| 3.2.1 荧光定量 PCR 引物设计及筛选 | 第28-29页 |
| 3.2.2 实时荧光定量 PCR 反应 | 第29-30页 |
| 3.3 结果与分析 | 第30-38页 |
| 3.3.1 甜瓜不同组织总 RNA 的提取及 RT-PCR 分析 | 第30-31页 |
| 3.3.2 实时荧光定量 PCR 分析 | 第31-38页 |
| 3.3.2.1 标准曲线、扩增曲线及溶解曲线分析 | 第31-35页 |
| 3.3.2.2 外源 GABA 对低氧胁迫下甜瓜幼苗 GST 基因表达差异分析 | 第35-36页 |
| 3.3.2.3 外源 GABA 对低氧胁迫下甜瓜幼苗多胺代谢酶基因表达差异分析 | 第36-38页 |
| 3.4 讨论 | 第38-40页 |
| 4 外源 GABA 对低氧胁迫下甜瓜幼苗 GSH 含量和 GST 活性的影响 | 第40-46页 |
| 4.1 测定项目与测定方法 | 第40-41页 |
| 4.1.1 生长指标的测定 | 第40页 |
| 4.1.2 谷胱甘肽（GSH）含量的测定 | 第40页 |
| 4.1.3 谷胱甘肽-S-转移酶活性的测定 | 第40-41页 |
| 4.1.3.1 实验原理及标准要求 | 第40页 |
| 4.1.3.2 实验步骤 | 第40-41页 |
| 4.2 数据处理 | 第41页 |
| 4.3 结果与分析 | 第41-44页 |
| 4.3.1 外源 GABA 对低氧胁迫下甜瓜幼苗生长量的影响 | 第41-42页 |
| 4.3.2 外源 GABA 对低氧胁迫下甜瓜幼苗 GSH 含量的影响 | 第42-43页 |
| 4.3.3 外源 GABA 对低氧胁迫下甜瓜幼苗 GST 活性的影响 | 第43-44页 |
| 4.4 讨论 | 第44-46页 |
| 5 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 在读期间发表的论文 | 第51-52页 |
| 作者简历 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
