缩略语表 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-12页 |
英文摘要 | 第12-17页 |
第一部分 GM1保护和促进海马神经发生,延缓衰老 | 第18-65页 |
引言 | 第18-20页 |
材料和方法 | 第20-32页 |
实验动物 | 第20页 |
药品和试剂 | 第20-21页 |
仪器 | 第21页 |
配液 | 第21-23页 |
实验方法 | 第23-32页 |
一.体外实验 | 第23-27页 |
1.胚胎海马NSCs的培养 | 第23页 |
2.胚胎海马NSCs细胞膜上存在GM1的间接证明 | 第23页 |
3.GM1对胚胎海马NSCs的促增殖作用 | 第23-24页 |
4.GM1对抗谷氨酸对胚胎海马NSCs的兴奋毒作用 | 第24-25页 |
5.GM1对胚胎海马NSCs分化方向的影响 | 第25-27页 |
二.GM1对D-半乳糖衰老模型小鼠脑内海马NPCs的影响 | 第27-32页 |
1.衰老模型小鼠的建立和分组处理 | 第27-28页 |
2.标本的收集 | 第28页 |
3.HE染色 | 第28-29页 |
4.TUNEL染色 | 第29页 |
5.BrdU免疫组织化学染色 | 第29-30页 |
6.免疫荧光双标染色 | 第30页 |
7.CREB免疫组织化学染色 | 第30-31页 |
8.阳性细胞计数方法 | 第31-32页 |
结果 | 第32-36页 |
一.GM1对NSCs增殖、分化的影响及其保护作用 | 第32-33页 |
1.胚胎海马NSCs细胞膜上存在GM1 | 第32页 |
2.GM1促进胚胎海马NSCs的增殖 | 第32页 |
3.GM1对抗谷氨酸对胚胎海马NSCs的兴奋毒作用 | 第32-33页 |
4.GM1促进胚胎海马NSCs的分化成熟 | 第33页 |
二.GM1保护D-半乳糖衰老模型小鼠海马的神经发生 | 第33-36页 |
1.GM1保护衰老模型小鼠血清中的氧化还原系统 | 第33页 |
2.GM1保护衰老模型小鼠海马的神经细胞 | 第33-34页 |
3.GM1保护衰老模型小鼠海马NPCs的增殖 | 第34页 |
4.GM1保护衰老模型小鼠海马NPCs的长期生存 | 第34-35页 |
5.GM1促进小鼠海马NPCs向神经元方向分化 | 第35页 |
6.GM1增加小鼠海马DG区神经细胞内pCREB的表达 | 第35-36页 |
图表 | 第36-52页 |
讨论 | 第52-57页 |
结论 | 第57-59页 |
参考文献 | 第59-65页 |
第二部分 GM1特异性配基偶联物CB-NGF的药效学评价 | 第65-100页 |
引言 | 第65-67页 |
材料和方法 | 第67-77页 |
实验动物 | 第67页 |
药品和试剂 | 第67页 |
仪器 | 第67-68页 |
配液 | 第68-70页 |
实验方法 | 第70-77页 |
一.CB-NGF连接 | 第70页 |
二.CB-NGF的体外药效学实验 | 第70-74页 |
1.PC12细胞培养 | 第70页 |
2.抑制细胞增殖实验 | 第70-71页 |
3.细胞神经突生长实验 | 第71页 |
4.细胞保护实验 | 第71页 |
5.ChAT活性测定 | 第71-72页 |
6.CB-NGF作用机制的探讨——Western Blot | 第72-74页 |
三.CB-NGF的体内药效学实验 | 第74-77页 |
1.痴呆模型小鼠的建立和分组处理 | 第74-75页 |
2.Morris水迷宫实验 | 第75页 |
3.BrdU免疫组织化学染色 | 第75-77页 |
结果 | 第77-80页 |
一.CB-NGF的体外药效学实验 | 第77-78页 |
1.CB-NGF抑制PC12细胞的增殖 | 第77页 |
2.CB-NGF促进PC12细胞的神经突生长 | 第77页 |
3.CB-NGF保护撤血清后的PC12细胞 | 第77-78页 |
4.CB-NGF增强PC12细胞ChAT活性 | 第78页 |
5.CB-NGF激活PC12细胞的TrkA受体 | 第78页 |
二.CB-NGF的体内药效学实验 | 第78-80页 |
1.Morris水迷宫实验 | 第78页 |
2.CB-NGF对小鼠脑内神经发生的影响 | 第78-80页 |
图表 | 第80-89页 |
讨论 | 第89-94页 |
结论 | 第94-95页 |
参考文献 | 第95-100页 |
综述一 神经节苷脂GM1神经保护机制的研究进展 | 第100-110页 |
综述二 神经干细胞诱导分化的研究进展 | 第110-119页 |
简历 | 第119-121页 |
致谢 | 第121页 |