| 英文缩写词表 | 第8-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第13-21页 |
| 1.1 骨质疏松症概况 | 第13-15页 |
| 1.1.1 骨质疏松症的分类 | 第13-14页 |
| 1.1.2 骨质疏松性骨折 | 第14页 |
| 1.1.3 骨质疏松症的发生机理 | 第14-15页 |
| 1.2 骨质疏松症防治研究及治疗现状 | 第15-17页 |
| 1.2.1 骨质疏松症的药物疗法 | 第15-16页 |
| 1.2.2 骨质疏松症的电磁疗法 | 第16-17页 |
| 1.3 初级纤毛与骨形成 | 第17-19页 |
| 1.3.1 初级纤毛概况 | 第17-18页 |
| 1.3.2 初级纤毛的功能 | 第18页 |
| 1.3.3 初级纤毛与骨形成 | 第18-19页 |
| 1.4 NO信号通路与骨形成 | 第19-21页 |
| 1.4.1 NO信号通路简介 | 第19页 |
| 1.4.2 NO信号通路与骨形成 | 第19-21页 |
| 第二章 脉冲电磁场激活NO-cGMP-PKG信号通路 | 第21-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第21页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 大鼠乳鼠颅骨原代成骨细胞提取实验 | 第22-23页 |
| 2.2.2 成骨细胞的传代培养 | 第23页 |
| 2.2.3 NO含量测定 | 第23-24页 |
| 2.2.4 胞内cGMP浓度测定 | 第24-25页 |
| 2.2.5 Western blotting检测 | 第25-26页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-31页 |
| 2.3.1 成骨细胞形态学观察 | 第26-27页 |
| 2.3.2 NO含量测定结果 | 第27-28页 |
| 2.3.3 cGMP浓度测定结果 | 第28-29页 |
| 2.3.4 脉冲电磁场对NO信号通路相关蛋白表达水平的影响 | 第29-31页 |
| 2.4 讨论与结论 | 第31-33页 |
| 第三章 脉冲电磁场通过NOS-NO-cGMP-PKG信号途径促进成骨细胞矿化成熟 | 第33-40页 |
| 3.1 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第33页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第33-34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-36页 |
| 3.2.1 成骨细胞培养 | 第34页 |
| 3.2.2 碱性磷酸酶活性测定 | 第34页 |
| 3.2.3 Real-Time RT-PCR分析 | 第34-35页 |
| 3.2.4 茜素红钙化结节染色 | 第35-36页 |
| 3.2.5 统计学分析 | 第36页 |
| 3.3 结果与分析 | 第36-39页 |
| 3.3.1 碱性磷酸酶活性检测结果 | 第36-37页 |
| 3.3.2 L-NAME对脉冲电磁场提高骨形成相关基因表达水平的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.3 L-NAME对脉冲电磁场提高成骨细胞钙化结节数量的影响 | 第38-39页 |
| 3.4 讨论与结论 | 第39-40页 |
| 第四章 RNA干扰法抑制初级纤毛的的发生 | 第40-49页 |
| 4.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第40页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第40-41页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-44页 |
| 4.2.1 成骨细胞的培养 | 第41页 |
| 4.2.2 质粒的扩增及提取 | 第41-42页 |
| 4.2.3 转染实验 | 第42-43页 |
| 4.2.4 光学显微镜观察初级纤毛 | 第43-44页 |
| 4.2.5 RT-PCR检测IFT88基因的表达 | 第44页 |
| 4.2.6 Western blotting检测IFT88蛋白的表达 | 第44页 |
| 4.2.7 统计学分析 | 第44页 |
| 4.3 结果与分析 | 第44-47页 |
| 4.3.1 转染后细胞状态观察 | 第44-45页 |
| 4.3.2 RNAi干扰前后初级纤毛的观察 | 第45-46页 |
| 4.3.3 IFT88基因和蛋白的表达结果 | 第46-47页 |
| 4.4 讨论与结论 | 第47-49页 |
| 第五章 脉冲电磁场通过初级纤毛及NO-cGMP-PKG信号通路促进成骨细胞矿化成熟 | 第49-58页 |
| 5.1 实验材料 | 第49页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第49页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第49页 |
| 5.1.3 主要仪器 | 第49页 |
| 5.2 实验方法 | 第49-51页 |
| 5.2.1 成骨细胞的培养 | 第49-50页 |
| 5.2.2 质粒扩增及细胞转染 | 第50页 |
| 5.2.3 NO含量测定 | 第50页 |
| 5.2.4 胞内cGMP浓度测定 | 第50页 |
| 5.2.5 碱性磷酸酶活性测定 | 第50页 |
| 5.2.6 Real-Time RT-PCR分析 | 第50页 |
| 5.2.7 Western blotting分析 | 第50页 |
| 5.2.8 茜素红钙化结节染色 | 第50页 |
| 5.2.9 统计学分析 | 第50-51页 |
| 5.3 结果与分析 | 第51-56页 |
| 5.3.1 初级纤毛干涉后对NO信号通路的影响 | 第51-54页 |
| 5.3.1.1 NO含量测定结果 | 第51页 |
| 5.3.1.2 cGMP浓度测定结果 | 第51-52页 |
| 5.3.1.3 NO信号通路相关基因测定结果 | 第52-53页 |
| 5.3.1.4 NO信号通路相关蛋白测定结果 | 第53-54页 |
| 5.3.2 成骨细胞矿化成熟依赖于初级纤毛及NO-cGMP-PKG信号途径 | 第54-56页 |
| 5.3.2.1 碱性磷酸酶活性检测结果 | 第54-55页 |
| 5.3.2.2 成骨性相关基因表达结果 | 第55-56页 |
| 5.3.2.3 茜素红钙化结节染色结果 | 第56页 |
| 5.4 讨论与分析 | 第56-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 附录A 攻读学位期间发表的论文 | 第67页 |
