摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
主要符号对照表 | 第8-9页 |
第1章 前言 | 第9-38页 |
1.1 植物光信号转导 | 第9-31页 |
1.1.1 植物光敏色素 | 第10-14页 |
1.1.2 植物光敏色素的功能 | 第14-18页 |
1.1.3 植物光敏色素的细胞定位 | 第18-23页 |
1.1.4 植物光敏色素信号转导的组份 | 第23-31页 |
1.2 植物非典型蛋白激酶ABC1K | 第31-37页 |
1.2.1 植物中的类蛋白激酶家族 | 第31-32页 |
1.2.2 植物中质体和线粒体定位的蛋白激酶 | 第32-33页 |
1.2.3 植物中的ABC1K家族成员 | 第33-37页 |
1.3 研究目的和意义 | 第37-38页 |
第2章 材料与方法 | 第38-48页 |
2.1 植物材料和生长条件 | 第38页 |
2.2 实验方法 | 第38-48页 |
2.2.1 分子生物学实验方法 | 第38-45页 |
2.2.2 生理学实验方法 | 第45-48页 |
第3章 BDR1/ABC1K1调控红光下拟南芥幼苗的发育 | 第48-67页 |
3.1 引言 | 第48-50页 |
3.1.1 研究综述 | 第48-49页 |
3.1.2 研究目的和意义 | 第49-50页 |
3.2 材料与方法 | 第50-53页 |
3.2.1 BDR1/ ABC1K1超表达植株的获得 | 第50页 |
3.2.2 拟南芥子叶花青素含量的测定 | 第50页 |
3.2.3 拟南芥子叶叶绿素含量的测定 | 第50-51页 |
3.2.4 β-葡聚糖苷酶 (GUS)染色 | 第51页 |
3.2.5 实时定量PCR (q RT-PCR)检测基因的表达 | 第51页 |
3.2.6 蛋白含量检测 | 第51-52页 |
3.2.7 引物序列 | 第52-53页 |
3.3 结果与分析 | 第53-67页 |
3.3.1 bdr1-1 突变体的分离 | 第53-56页 |
3.3.2 bdr1突变体子叶内发生的叶绿素降解并非由光氧化胁迫引发 | 第56-58页 |
3.3.3 BDR1编码叶绿体定位的ABC1K家族蛋白激酶ABC1K1 | 第58-59页 |
3.3.4 BDR1/ABC1K1特异的在子叶和中柱鞘内表达 | 第59-61页 |
3.3.5 BDR1/ABC1K1定位到质体 | 第61-62页 |
3.3.6 BDR1/ABC1K1在遗传上作用于phy B和HY5下游 | 第62-67页 |
第4章 bdr1-2 突变体遗传抑制子的筛选及功能分析 | 第67-84页 |
4.1 引言 | 第67-68页 |
4.1.1 拟南芥基因的图位克隆 | 第67-68页 |
4.1.2 研究目的和意义 | 第68页 |
4.2 材料和方法 | 第68-72页 |
4.2.1 植物材料 | 第68-69页 |
4.2.2 实验方法 | 第69-72页 |
4.3 结果与分析 | 第72-84页 |
4.3.1 bdr1-2 突变体遗传抑制子突变体库的构建和筛选 | 第72-73页 |
4.3.2 rbd1能够很好的抑制bdr1突变体的表型 | 第73-75页 |
4.3.3 bdr1-2 突变体遗传抑制子RBD1基因的图位克隆 | 第75-78页 |
4.3.4 rbd1能够恢复bdr1-2 phy B-9 和bdr1-2 hy5双突变体的表型 | 第78-80页 |
4.3.5 超表达RBD1的植物表型类似于bdr1突变体 | 第80-82页 |
4.3.6 RBD1的蛋白定位 | 第82页 |
4.3.7 RBD1是一个通过反转座产生的新基因 | 第82-84页 |
第5章 讨论与展望 | 第84-91页 |
5.1 ABC1K1在红光介导的植物生长发育过程中的作用 | 第84-86页 |
5.2 ABC1K1与ABC1K3协同调控植物适应外界环境的机制 | 第86-91页 |
第6章 其他研究工作 | 第91-97页 |
6.1 研究背景 | 第91-92页 |
6.2 结果与分析 | 第92-96页 |
6.2.1 fist1突变体的遗传抑制子的筛选 | 第92-93页 |
6.2.2 fist1突变体的遗传抑制子的克隆 | 第93-96页 |
6.3 讨论 | 第96-97页 |
参考文献 | 第97-117页 |
致谢 | 第117-119页 |
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第119页 |