| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第1章 绪论 | 第13-31页 |
| 1.1 形状记忆聚合物 | 第13-18页 |
| 1.1.1 形状记忆聚合物概述 | 第13页 |
| 1.1.2 形状记忆聚合物原理 | 第13-14页 |
| 1.1.3 形状记忆聚合物的分类 | 第14-17页 |
| 1.1.4 形状记忆聚合物在生物医学领域的应用 | 第17-18页 |
| 1.2 表面微图形及其对细胞的影响 | 第18-24页 |
| 1.2.1 微图形简介 | 第18-20页 |
| 1.2.2 材料表面微图形化技术 | 第20-22页 |
| 1.2.3 微图形与细胞间的相互作用 | 第22-24页 |
| 1.3 血管组织工程 | 第24-28页 |
| 1.3.1 血管组织工程研究背景 | 第24-25页 |
| 1.3.2 血管组织工程研究现状 | 第25-28页 |
| 1.3.3 血管组织工程未来方向 | 第28页 |
| 1.4 本论文研究目的、研究内容及创新 | 第28-31页 |
| 1.4.1 研究意义及目的 | 第28-29页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第29-30页 |
| 1.4.3 本课题的主要创新点 | 第30-31页 |
| 第2章 热致型形状记忆c-4 arm PEG-PCL的制备与表征 | 第31-46页 |
| 2.1 实验试剂与仪器 | 第31-33页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第31-32页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第32-33页 |
| 2.2 c-4 arm PEG-PCL的合成 | 第33-34页 |
| 2.2.1 ε-CL单体的纯化 | 第33页 |
| 2.2.2 4 arm PEG的纯化 | 第33页 |
| 2.2.3 4 arm PEG-PCL-AC的合成 | 第33-34页 |
| 2.2.4 c-4 arm PEG-PCL的合成 | 第34页 |
| 2.3 材料的表征方法 | 第34-37页 |
| 2.3.1 傅里叶变换红外光谱(FT-IR) | 第34-35页 |
| 2.3.2 核磁共振氢谱(~1H-NMR) | 第35页 |
| 2.3.3 差示扫描量热分析(DSC) | 第35页 |
| 2.3.4 溶胀度测试 | 第35页 |
| 2.3.5 动态热机械性能分析(DMA) | 第35页 |
| 2.3.6 材料的形状记忆性能表征 | 第35-36页 |
| 2.3.7 X射线衍射(XRD) | 第36页 |
| 2.3.8 凝胶含量测试 | 第36-37页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第37-45页 |
| 2.4.1 FT-IR表征 | 第37页 |
| 2.4.2 1H-NMR表征 | 第37-38页 |
| 2.4.3 热性能分析 | 第38-39页 |
| 2.4.4 溶胀度表征 | 第39-40页 |
| 2.4.5 动态热机械性能分析 | 第40-41页 |
| 2.4.6 材料的形状记忆性能表征 | 第41-42页 |
| 2.4.7 材料的结晶性能表征 | 第42-44页 |
| 2.4.8 凝胶含量及其对结晶性影响的考察 | 第44-45页 |
| 2.5 本章小结 | 第45-46页 |
| 第3章 形状记忆微图形的制备及其对内皮细胞及平滑肌细胞的调控 | 第46-61页 |
| 3.1 形状记忆表面微图形基底的制备 | 第46-49页 |
| 3.1.1 微图形模板的设计与表征 | 第46-47页 |
| 3.1.2 形状记忆微图形的制备及变形回复 | 第47-49页 |
| 3.2 SMCs与ECs的分离及培养 | 第49-51页 |
| 3.2.1 生化试剂及仪器 | 第49页 |
| 3.2.2 SMCs的提取及培养 | 第49-50页 |
| 3.2.3 ECs的提取及培养 | 第50页 |
| 3.2.4 SMCs与ECs在形状记忆微图形基底上的变温培养 | 第50-51页 |
| 3.3 实验表征测试方法 | 第51-53页 |
| 3.3.1 扫描电子显微镜(SEM)表征 | 第51页 |
| 3.3.2 体外细胞毒性测试 | 第51-52页 |
| 3.3.3 荧光显微镜 | 第52页 |
| 3.3.4 激光共聚焦显微镜 | 第52-53页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第53-60页 |
| 3.4.1 材料的微观形状记忆性能表征 | 第53页 |
| 3.4.2 体外细胞毒性测试 | 第53-55页 |
| 3.4.3 SMCs在形状记忆微图形表面的粘附及分布 | 第55-58页 |
| 3.4.4 ECs在形状记忆微图形表面的粘附及分布 | 第58-60页 |
| 3.5 本章小结 | 第60-61页 |
| 第4章 SMCs/ECs在形状记忆微图形基底上的共培养及血管支架的制备和体内植入 | 第61-71页 |
| 4.1 试剂及仪器 | 第61-62页 |
| 4.2 SMCs/ECs的共培养模型 | 第62页 |
| 4.3 血管支架的制备及动物体内植入实验 | 第62-64页 |
| 4.3.1 c-4 arm PEG-PCL形状记忆血管支架的制备 | 第62-63页 |
| 4.3.2 动物体内植入实验 | 第63-64页 |
| 4.4 实验表征测试方法 | 第64-66页 |
| 4.4.1 SMCs/ECs共培养体系的体外细胞毒性测试 | 第64页 |
| 4.4.2 激光共聚焦显微镜 | 第64-65页 |
| 4.4.3 半定量逆转录聚合酶链式反应(Semi-Quantitative RT-PCR) | 第65页 |
| 4.4.4 组织学染色 | 第65-66页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第66-70页 |
| 4.5.1 SMCs/ECs共培养体系的体外细胞毒性测试 | 第66-67页 |
| 4.5.2 SMCs/ECs在形状记忆微图形表面的粘附及分布 | 第67-68页 |
| 4.5.3 SMPs微图案基底对SMCs和ECs功能性的影响 | 第68-69页 |
| 4.5.4 组织学分析 | 第69-70页 |
| 4.6 本章小结 | 第70-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第79页 |
