| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 研究现状、成果 | 第12-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-14页 |
| 一、HCC组织中NTS的表达及意义 | 第14-24页 |
| 1.1 对象和方法 | 第14-16页 |
| 1.1.1 病例来源 | 第14页 |
| 1.1.2 标本来源 | 第14-15页 |
| 1.1.3 免疫组织化学染色试剂 | 第15页 |
| 1.1.4 免疫组织化学染色 | 第15-16页 |
| 1.1.5 统计学处理 | 第16页 |
| 1.2 结果 | 第16-22页 |
| 1.2.1 HCC癌组织及癌旁中NTS的表达情况 | 第16-17页 |
| 1.2.2 NTS异常表达与患者临床病理指标的相关性 | 第17-18页 |
| 1.2.3 NTS异常表达与HCC患者预后的相关性 | 第18-19页 |
| 1.2.4 NTS异常表达与HCC细胞增殖和EMT的相关性 | 第19-22页 |
| 1.3 讨论 | 第22-23页 |
| 1.4 小结 | 第23-24页 |
| 二、HCC细胞系中NTS与EMT的相关研究 | 第24-54页 |
| 2.1 对象和方法 | 第24-36页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第24页 |
| 2.1.2 细胞培养试剂 | 第24页 |
| 2.1.3 细胞转染试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.4 细胞功能实验试剂 | 第25页 |
| 2.1.5 荧光实时定量PCR试剂 | 第25页 |
| 2.1.6 Western Blot试剂 | 第25页 |
| 2.1.7 ELISA试剂 | 第25页 |
| 2.1.8 慢病毒基因转染 | 第25-30页 |
| 2.1.9 siRNA转染 | 第30页 |
| 2.1.10 细胞功能实验 | 第30-32页 |
| 2.1.11 荧光实时定量PCR | 第32-33页 |
| 2.1.12 Western Blot | 第33-35页 |
| 2.1.13 ELISA | 第35-36页 |
| 2.2 结果 | 第36-52页 |
| 2.2.1 不同HCC细胞系内NTS和NTR1的表达 | 第36-37页 |
| 2.2.2 不同NTR1表达水平的HCC细胞系的构建 | 第37-38页 |
| 2.2.3 不同NTR1表达水平的HCC细胞中NTS的分泌量 | 第38-39页 |
| 2.2.4 外源性NTS对不同NTR1表达水平的HCC细胞生长的影响 | 第39-44页 |
| 2.2.5 外源性NTS对不同NTR1表达水平的HCC细胞侵袭的影响 | 第44-48页 |
| 2.2.6 外源性NTS刺激和高表达NTR1促进HCC细胞EMT | 第48-52页 |
| 2.3 讨论 | 第52-53页 |
| 2.4 小结 | 第53-54页 |
| 三、NTS促进HCC细胞EMT机制探讨 | 第54-67页 |
| 3.1 对象和方法 | 第54-56页 |
| 3.1.1 细胞系 | 第54页 |
| 3.1.2 细胞培养试剂 | 第54页 |
| 3.1.3 PCR芯片相关试剂 | 第54页 |
| 3.1.4 细胞转导信号通路阻断剂 | 第54页 |
| 3.1.5 Western Blot试剂 | 第54-55页 |
| 3.1.6 PCR芯片 | 第55-56页 |
| 3.1.7 细胞信号阻断实验 | 第56页 |
| 3.2 结果 | 第56-65页 |
| 3.2.1 外源性NTS刺激和高表达NTR1促进HCC细胞EMT与Wnt通路激活有关 | 第56-60页 |
| 3.2.2 SR48692及TWS119对HCC细胞EMT和Wnt/β-catenin通路的影响 | 第60-63页 |
| 3.2.3 SR48692及TWS119对HCC细胞侵袭性的影响 | 第63-65页 |
| 3.3 讨论 | 第65-66页 |
| 3.4 小结 | 第66-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第72-73页 |
| 附录 | 第73-75页 |
| 综述 神经降压素/白介素8通路影响肿瘤上皮间质转化的研究进展 | 第75-89页 |
| 综述参考文献 | 第82-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
