| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 主要符号对照表 | 第10-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-14页 |
| 第2章 材料与方法 | 第14-24页 |
| 2.1 材料 | 第14-15页 |
| 2.1.1 动物及饲料 | 第14页 |
| 2.1.2 主要试剂与仪器 | 第14-15页 |
| 2.2 实验方法 | 第15-22页 |
| 2.2.1 动物造模 | 第15-16页 |
| 2.2.2 标本采集与预处理 | 第16页 |
| 2.2.3 视网膜匀浆液的制备 | 第16页 |
| 2.2.4 实验相关溶液的配制 | 第16-17页 |
| 2.2.5 HE染色观察视网膜组织形态变化 | 第17-18页 |
| 2.2.6 免疫组织化学染色法检测GFAP、HIF-1 的表达 | 第18页 |
| 2.2.7 电镜下观察视神经超微结构变化 | 第18-19页 |
| 2.2.8 用ELISA法测定视网膜匀浆液GSH-PX、SOD活性 | 第19-20页 |
| 2.2.9 RT-PCR法检测NF-κB、SOD、HIF与BDNF mRNA的表达 | 第20-22页 |
| 2.2.9.2 RNA的提取 | 第20-21页 |
| 2.2.9.3 测定RNA的纯度和RNA的定量 | 第21页 |
| 2.2.9.4 RT-PCR实验 | 第21页 |
| 2.2.9.5 荧光定量PCR扩增 | 第21-22页 |
| 2.3 统计方法 | 第22-23页 |
| 2.4 技术路线 | 第23-24页 |
| 第3章 结果 | 第24-27页 |
| 3.1 各组视网膜组织切片比较 | 第24页 |
| 3.2 各组大鼠视神经超微结构变化 | 第24页 |
| 3.3 各组SOD、GSH-PX活性对比 | 第24-25页 |
| 3.4 各组GFAP、HIF-1 表达情况 | 第25页 |
| 3.5 RT-PCR结果 | 第25-27页 |
| 第4章 讨论 | 第27-33页 |
| 4.1 急性高海拔缺氧大鼠模型的建立 | 第27页 |
| 4.2 高原缺氧对视网膜损伤的相关因子分析 | 第27-30页 |
| 4.3 白藜芦醇的药理作用 | 第30-31页 |
| 4.4 实验结果分析 | 第31-33页 |
| 第5章 结论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 文献综述 | 第40-49页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 作者简介 | 第49-50页 |
| 附录 | 第50-53页 |
