| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-22页 |
| 1 植物再生体系的建立 | 第13-16页 |
| 1.1 竹子再生体系的建立 | 第13-16页 |
| 1.1.1 外植体的选择 | 第13-14页 |
| 1.1.2 基本培养基的选择 | 第14-15页 |
| 1.1.3 植物生长调节剂的选择 | 第15-16页 |
| 1.2 禾谷类植物再生体系的建立 | 第16页 |
| 2 农杆菌介导的植物转基因研究 | 第16-18页 |
| 2.1 竹子转基因研究 | 第17页 |
| 2.2 禾谷类植物转基因研究 | 第17-18页 |
| 3 竹子组织培养技术和转基因研究的应用前景 | 第18-19页 |
| 3.1 快速繁殖 | 第18页 |
| 3.2 种质保存 | 第18-19页 |
| 3.3 杂交育种 | 第19页 |
| 3.4 突变体筛选和良种选育 | 第19页 |
| 4 竹子组织培养技术和转基因研究存在的问题 | 第19-21页 |
| 4.1 外植体的选择和消毒 | 第19-20页 |
| 4.2 材料的褐化与玻璃化 | 第20页 |
| 4.3 愈伤组织诱导与分化率低 | 第20页 |
| 4.4 竹子转基因技术尚未成熟 | 第20-21页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
| 第二章 Mniochloa abersend的生物学特性 | 第22-27页 |
| 1 材料与方法 | 第22-23页 |
| 1.1 试验材料及原产地概况 | 第22页 |
| 1.2 引种地概况 | 第22页 |
| 1.3 研究方法 | 第22-23页 |
| 1.3.1 形态特征及引种适应性观察 | 第22页 |
| 1.3.2 开花生物学特性观察 | 第22-23页 |
| 2 结果与分析 | 第23-25页 |
| 2.1 形态特征及引种适应性分析 | 第23页 |
| 2.2 开花预兆 | 第23页 |
| 2.3 开花次序 | 第23页 |
| 2.4 开花周期及持续时间 | 第23-24页 |
| 2.5 花序结构 | 第24页 |
| 2.6 结实情况 | 第24-25页 |
| 3 小结及讨论 | 第25-27页 |
| 3.1 小结 | 第25页 |
| 3.2 讨论 | 第25-27页 |
| 第三章 Mniochloa abersend愈伤组织诱导及再生体系的建立 | 第27-41页 |
| 1 材料与方法 | 第27-30页 |
| 1.1 试验材料 | 第27页 |
| 1.2 无菌体系的建立 | 第27页 |
| 1.3 筛选适宜愈伤组织诱导的基本培养基 | 第27页 |
| 1.4 筛选适宜愈伤组织诱导的 2,4-D浓度 | 第27-28页 |
| 1.5 筛选适宜愈伤组织诱导的NAA浓度 | 第28页 |
| 1.6 筛选适宜愈伤组织诱导的BA浓度 | 第28页 |
| 1.7 BA浓度对愈伤组织增殖的影响 | 第28页 |
| 1.8 2,4-D浓度对愈伤组织增殖的影响 | 第28页 |
| 1.9 筛选适宜愈伤组织分化的植物激素组合 | 第28-29页 |
| 1.10 观察愈伤组织长期保存的能力 | 第29页 |
| 1.11 筛选适宜试管苗生根诱导的IBA浓度 | 第29页 |
| 1.12 再生植株的驯化与移栽 | 第29页 |
| 1.13 培养条件 | 第29页 |
| 1.14 数据统计与分析 | 第29-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-37页 |
| 2.1 筛选适宜愈伤组织诱导的基本培养基 | 第30-31页 |
| 2.2 筛选适宜愈伤组织诱导的 2,4-D浓度 | 第31-32页 |
| 2.3 筛选适宜愈伤组织诱导的NAA浓度 | 第32-33页 |
| 2.4 筛选适宜愈伤组织诱导的BA浓度 | 第33-34页 |
| 2.5 BA浓度对愈伤组织增殖的影响 | 第34-35页 |
| 2.6 2, 4-D浓度对愈伤组织增殖的影响 | 第35页 |
| 2.7 筛选适宜愈伤组织分化的植物激素组合 | 第35-36页 |
| 2.8 观察愈伤组织长期保存的能力 | 第36页 |
| 2.9 筛选适宜试管苗生根诱导的IBA浓度 | 第36-37页 |
| 2.10 再生植株的驯化与移栽 | 第37页 |
| 3 小结与讨论 | 第37-41页 |
| 3.1 小结 | 第37-38页 |
| 3.2 讨论 | 第38-41页 |
| 3.2.1 外植体对再生体系建立的影响 | 第38页 |
| 3.2.2 基本培养基对再生体系建立的影响 | 第38页 |
| 3.2.3 植物激素对愈伤组织诱导和增殖的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.4 植物激素对愈伤组织分化的影响 | 第39页 |
| 3.2.5 植物激素对试管苗生根的影响 | 第39-40页 |
| 3.2.6 体细胞胚胎发生与器官发生途径 | 第40-41页 |
| 第四章 农杆菌介导的Mniochloa abersend遗传转化研究 | 第41-52页 |
| 1 材料与方法 | 第41-45页 |
| 1.1 转化受体材料 | 第41页 |
| 1.2 农杆菌菌株与质粒 | 第41页 |
| 1.3 潮霉素选择压的筛选 | 第41页 |
| 1.4 遗传转化过程中所用的培养基 | 第41-42页 |
| 1.5 遗传转化过程 | 第42-43页 |
| 1.5.1 愈伤组织预培养 | 第42页 |
| 1.5.2 农杆菌的培养 | 第42页 |
| 1.5.3 农杆菌侵染及共培养 | 第42页 |
| 1.5.4 恢复培养 | 第42-43页 |
| 1.5.5 筛选培养 | 第43页 |
| 1.5.6 分化培养 | 第43页 |
| 1.5.7 生根培养 | 第43页 |
| 1.6 遗传转化条件的探索 | 第43-44页 |
| 1.6.1 预培养对愈伤组织转化的影响 | 第43页 |
| 1.6.2 农杆菌菌株对愈伤组织转化的影响 | 第43页 |
| 1.6.3 菌液浓度对愈伤组织转化的影响 | 第43页 |
| 1.6.4 侵染时间对愈伤组织转化的影响 | 第43页 |
| 1.6.5 共培养时间对愈伤组织转化的影响 | 第43-44页 |
| 1.7 转化频率计算 | 第44页 |
| 1.8 转基因愈伤组织与植株的PCR分子鉴定 | 第44-45页 |
| 1.8.1 DNA提取 | 第44-45页 |
| 1.8.2 PCR鉴定 | 第45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-50页 |
| 2.1 潮霉素选择压的筛选 | 第45-46页 |
| 2.2 预培养对愈伤组织转化的影响 | 第46-47页 |
| 2.3 农杆菌菌株对愈伤组织转化的影响 | 第47页 |
| 2.4 菌液浓度对愈伤组织转化的影响 | 第47-48页 |
| 2.5 侵染时间对愈伤组织转化的影响 | 第48页 |
| 2.6 共培养时间对愈伤组织转化的影响 | 第48-49页 |
| 2.7 转基因愈伤组织的PCR分子检测 | 第49-50页 |
| 3 小结与讨论 | 第50-52页 |
| 3.1 小结 | 第50页 |
| 3.2 讨论 | 第50-52页 |
| 3.2.1 转化受体材料对转化的影响 | 第50页 |
| 3.2.2 农杆菌菌株对转化的影响 | 第50-51页 |
| 3.2.3 农杆菌菌液浓度及侵染时间对转化的影响 | 第51页 |
| 3.2.4 共培养时间对转化的影响 | 第51-52页 |
| 第五章 结论与展望 | 第52-54页 |
| 1 结论 | 第52-53页 |
| 1.1 M. abersend的生物学特性 | 第52页 |
| 1.2 M. abersend愈伤组织诱导及再生体系的建立 | 第52-53页 |
| 1.3 农杆菌介导的M. abersend遗传转化研究 | 第53页 |
| 2 展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 附图 | 第62-69页 |
| 附录 | 第69-70页 |
| 个人简介 | 第70页 |
| 在读期间发表文章 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
