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VSV G跨膜区在融合过程中的作用机制研究及亚硒酸钠通过p70S6K/p53/ULKl通路诱导ROS上调抑制保护性自噬

中文摘要第6-8页
Abstract第8-9页
第一部分 VSV G跨膜区在融合中的作用机制第10-39页
    前言第10-16页
    材料和方法第16-23页
        1. 实验材料第16-18页
            1.1. 细胞株第16页
            1.2. 质粒第16页
            1.3. 大肠杆菌菌株第16页
            1.4. 主要试剂第16-17页
            1.5. 抗体第17页
            1.6. 主要仪器第17-18页
        2. 实验方法第18-23页
            2.1. 细胞培养第18页
            2.2. Western blot第18-19页
            2.3. 膜蛋白生物素标记实验第19页
            2.4. 细胞-细胞融合实验第19-20页
            2.5. 目的基因的定点突变第20-21页
            2.6. 慢病毒的制备和滴度测定第21页
            2.7. 细胞半融合实验第21-23页
    实验结果第23-36页
        1. VSV G介导细胞-细胞融合第23-24页
        2. 跨膜区的替换不会影响VSV G的表达及其在质膜的定位第24-26页
            2.1. VSV G跨膜区替换第24-25页
            2.2. 跨膜区替换不会影响VSV G的表达第25页
            2.3. 跨膜区替换不会影响VSV G在细胞质膜上的定位第25-26页
        3. 跨膜区替换显著降低VSV G的融合效率第26-28页
        4. 跨膜区替换显著降低VSV G介导的慢病毒感染效率第28-29页
        5. 跨膜区替换将融合阻断在了半融合阶段第29-31页
        6. VSV G的融合活性对跨膜区有序列依赖性第31-36页
    讨论第36-38页
    小结第38-39页
第二部分 亚硒酸钠通过p70S6K/p53/ULK1通路诱导活性氧上调抑制保护性自噬第39-85页
    前言第39-44页
    材料和方法第44-60页
        1. 实验材料第44-48页
            1.1. 细胞株第44页
            1.2. 大肠杆菌菌株第44页
            1.3. 主要试剂第44-45页
            1.4. 使用的抗体第45页
            1.5. 靶基因siRNA序列第45页
            1.6. 实时定量PCR所用引物第45页
            1.7. 主要溶液的配制第45-47页
            1.8. 主要仪器第47-48页
        2. 实验方法第48-60页
            2.1. 细胞培养第48页
            2.2. Annexin V-FITC/PI双染流式细胞术凋亡检测第48-49页
            2.3. DCFH-DA荧光探针法检测细胞内活性氧第49-50页
            2.4. 免疫共沉淀第50页
            2.5. 免疫细胞化学染色第50-51页
            2.6. 细胞转染方法(RNAi和质粒的转染)第51-52页
            2.7. 细菌的转化和质粒的提取第52-53页
            2.8. 染色质免疫共沉淀(ChIP)第53-57页
            2.9. 裸鼠致瘤实验中脏器及肿瘤组织石蜡块制备和切片方法第57-58页
            2.10. 免疫组织化学染色(EnVision法)第58-59页
            2.11. 统计分析第59-60页
    实验结果第60-81页
        1. 亚硒酸钠抑制白血病细胞自噬,诱导凋亡第60-62页
            1.1. 亚硒酸钠诱导NB4细胞凋亡第60页
            1.2. 亚硒酸钠抑制NB4细胞自噬第60-61页
            1.3. Western blot检测亚硒酸钠作用下凋亡和自噬相关蛋白的变化第61-62页
        2. 活性氧是亚硒酸钠诱导的细胞自噬中的上游调控因子第62-68页
            2.4. 亚硒酸钠诱导NB4细胞内活性氧水平上升第62-63页
            2.5. 亚硒酸钠诱导的活性氧介导NB4细胞凋亡第63-64页
            2.6. 亚硒酸钠诱导NB4细胞产生活性氧抑制自噬第64-66页
            2.7. Western blot检测活性氧对于细胞凋亡和自噬关键分子的变化第66-67页
            2.8. 亚硒酸钠诱导的活性氧不会阻断自噬流的进程第67-68页
        3. 活性氧通过下调NB4细胞中ULK1的表达水平抑制自噬第68-69页
        4. ULK1作为自噬起始物能够对抗亚硒酸钠诱导的凋亡第69-72页
            4.1. ULK1诱导自噬第70页
            4.2. ULK1抑制亚硒酸钠诱导的NB4细胞凋亡第70-72页
        5. p-p53(Ser392)促进ULK1的表达第72-75页
            5.1. p53 Ser392位磷酸化水平影响ULK1的表达第72-74页
            5.2. p-p53 (Ser392)与ULK1启动子结合第74-75页
        6. p-p70S6K介导p53 Ser392位磷酸化参与自噬调节第75-79页
        7. 亚硒酸钠对裸鼠异种移植瘤模型肿瘤组织内p70S6K/p53/ULK1的表达影响第79-81页
    讨论第81-84页
    小结第84-85页
参考文献第85-95页
文献综述一第95-106页
    参考文献第101-106页
文献综述二第106-112页
    参考文献第111-112页
缩略词表第112-113页
致谢第113-114页
研究生在读期间参加学术活动、发表论文情况第114-116页

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