| 中文摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 1 前言 | 第15-28页 |
| 1.1 禽白血病病毒（ALV）的研究进展 | 第15-21页 |
| 1.1.1 病原学 | 第15-17页 |
| 1.1.2 病毒复制 | 第17-18页 |
| 1.1.3 流行病学 | 第18-19页 |
| 1.1.4 ALV-J致病性 | 第19-20页 |
| 1.1.5 ALV-J抗体和病毒血症存在情况 | 第20页 |
| 1.1.6 ALV-J的诊断 | 第20-21页 |
| 1.1.7 ALV-J的预防 | 第21页 |
| 1.2 HIV的研究进展 | 第21-27页 |
| 1.2.1 病原学 | 第22页 |
| 1.2.2 病毒的复制 | 第22-23页 |
| 1.2.3 HIV的检测 | 第23页 |
| 1.2.4 发病机理 | 第23-24页 |
| 1.2.5 治疗药物 | 第24-27页 |
| 1.2.6 HIV耐药性检测 | 第27页 |
| 1.3 本试验研究的目的和意义 | 第27-28页 |
| 2 材料和方法 | 第28-37页 |
| 2.1 材料 | 第28-29页 |
| 2.1.1 细胞、病毒与抗体 | 第28-29页 |
| 2.1.2 药物与疫苗 | 第29页 |
| 2.1.3 主要试剂及仪器 | 第29页 |
| 2.2 方法 | 第29-37页 |
| 2.2.1 不同浓度药物的配制 | 第29-30页 |
| 2.2.2 细胞安全药物浓度的确定 | 第30页 |
| 2.2.3 不同浓度LAM对ALV-J体外抑制实验 | 第30页 |
| 2.2.4 ALV-p27抗原检测 | 第30-31页 |
| 2.2.5 药物选择压下的细胞连续传代实验设计 | 第31-32页 |
| 2.2.6 不同浓度LAM对海兰褐鸡生产性能影响实验设计 | 第32页 |
| 2.2.7 体重指数测定 | 第32页 |
| 2.2.8 NDV和AIV-H9灭活疫苗的免疫和抗体水平的测定 | 第32页 |
| 2.2.9 血凝血抑测定抗体滴度 | 第32-33页 |
| 2.2.10 统计学分析 | 第33页 |
| 2.2.11 不同剂量LAM对ALV-J在海兰褐鸡内复制的抑制实验 | 第33-34页 |
| 2.2.12 病毒分离 | 第34页 |
| 2.2.13 人工模拟应用LAM去除疫苗毒种中ALV-A污染实验 | 第34页 |
| 2.2.14 抗体检测 | 第34-35页 |
| 2.2.15 病毒RNA的提取 | 第35页 |
| 2.2.16 RT-PCR | 第35-36页 |
| 2.2.17 斑点分子杂交 | 第36-37页 |
| 3 结果 | 第37-43页 |
| 3.1 DF-1 细胞安全药物浓度确定 | 第37-38页 |
| 3.2 第六十代耐药毒株的验证 | 第38-39页 |
| 3.3 不同LAM添加浓度对ALV-J体外复制的抑制作用 | 第39-40页 |
| 3.4 不同浓度LAM对海兰褐鸡生长速度的影响 | 第40-41页 |
| 3.5 不同浓度LAM对NDV和AIV-H9免疫的抗体反应的影响 | 第41-42页 |
| 3.6 不同剂量LAM对ALV-J在海兰褐鸡体内复制的抑制作用 | 第42页 |
| 3.7 应用LAM去除疫苗毒种中ALV-A污染 | 第42-43页 |
| 4 讨论 | 第43-47页 |
| 4.1 不同浓度LAM对ALV-J体外抑制实验 | 第44-45页 |
| 4.2 药物选择压下耐药毒株的产生 | 第45页 |
| 4.3 不同剂量LAM对ALV-J在海兰褐鸡内复制的抑制实验 | 第45-46页 |
| 4.4 人工模拟应用LAM去除疫苗毒种中ALV-A污染实验 | 第46-47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 6 参考文献 | 第48-56页 |
| 7 致谢 | 第56-57页 |
| 8 硕士期间发表的论文 | 第57页 |
