| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 1 绪论 | 第15-25页 |
| 1.1 研究背景及立题依据 | 第15-21页 |
| 1.1.1 有机氯杀虫剂 | 第15-17页 |
| 1.1.2 苯并咪唑类杀菌剂 | 第17-19页 |
| 1.1.3 三唑类杀菌剂 | 第19-21页 |
| 1.2 研究目的及意义 | 第21-22页 |
| 1.2.1 有机氯杀虫剂 | 第21页 |
| 1.2.2 苯并咪唑类杀菌剂 | 第21-22页 |
| 1.2.3 三唑类杀菌剂 | 第22页 |
| 1.3 研究内容及技术路线 | 第22-25页 |
| 1.3.1 研究内容 | 第22-23页 |
| 1.3.2 技术路线 | 第23-25页 |
| 2 文献综述 | 第25-37页 |
| 2.1 三类典型农药概况 | 第25-28页 |
| 2.1.1 典型有机氯杀虫剂的概况 | 第25-26页 |
| 2.1.2 典型苯并咪唑类杀菌剂概况 | 第26-27页 |
| 2.1.3 典型三唑类杀菌剂概况 | 第27-28页 |
| 2.2 三类典型农药残留水平 | 第28-31页 |
| 2.2.1 典型有机氯杀虫剂残留水平 | 第28-29页 |
| 2.2.2 典型苯并咪唑类杀菌剂的残留水平 | 第29-30页 |
| 2.2.3 三唑类杀菌剂的残留水平 | 第30-31页 |
| 2.3 三类典型农药的生殖内分泌毒性研究进展 | 第31-37页 |
| 2.3.1 典型有机氯杀虫剂的生殖内分泌毒性研究进展 | 第31-33页 |
| 2.3.2 典型苯并咪唑类杀菌剂的生殖内分泌毒性研究进展 | 第33-34页 |
| 2.3.3 典型三唑类杀菌剂的生殖内分泌毒性研究进展 | 第34-37页 |
| 3 DDT类似物对垂体促性腺激素分泌的干扰作用研究 | 第37-61页 |
| 3.1 前言 | 第37-38页 |
| 3.2 材料和方法 | 第38-50页 |
| 3.2.1 主要试剂及仪器 | 第38-42页 |
| 3.2.2 细胞系的建立与培养 | 第42-43页 |
| 3.2.3 MTS细胞活性实验 | 第43页 |
| 3.2.4 细胞RNA的提取 | 第43-44页 |
| 3.2.5 RNA反转录 | 第44-45页 |
| 3.2.6 实时荧光定量PCR | 第45-46页 |
| 3.2.7 细胞蛋白的提取 | 第46-47页 |
| 3.2.8 蛋白浓度测定 | 第47-48页 |
| 3.2.9 Western Blotting实验 | 第48-50页 |
| 3.2.10 数据处理 | 第50页 |
| 3.3 结果 | 第50-56页 |
| 3.3.1 DDT类似物对LβT2细胞活性影响 | 第50-51页 |
| 3.3.2 p,p'-DDT和MXC促进LβT2细胞中促性腺激素基因转录 | 第51-52页 |
| 3.3.3 p,p'-DDT和MXC促进LβT2细胞中促性腺激素分泌 | 第52-53页 |
| 3.3.4 p,p'-DDT和MXC通过ERK信号通路对LβT2细胞中促性腺激素基因转录的影响 | 第53-55页 |
| 3.3.5 p,p'-DDT和MXC对LβT2细胞中ERK信号通路调节 | 第55-56页 |
| 3.4 讨论 | 第56-58页 |
| 3.5 小结 | 第58-61页 |
| 4 苯菌灵和多菌灵对人胎盘滋养层细胞的毒性作用研究 | 第61-79页 |
| 4.1 前言 | 第61-62页 |
| 4.2 材料和方法 | 第62-67页 |
| 4.2.1 材料 | 第62页 |
| 4.2.2 细胞培养 | 第62页 |
| 4.2.3 MTS细胞活性实验 | 第62-63页 |
| 4.2.4 细胞周期检测 | 第63页 |
| 4.2.5 细胞凋亡检测 | 第63-64页 |
| 4.2.6 侵润实验检测 | 第64-65页 |
| 4.2.7 伤口愈合实验 | 第65-66页 |
| 4.2.8 实时荧光定量PCR | 第66页 |
| 4.2.9 数据处理 | 第66-67页 |
| 4.3 实验结果 | 第67-75页 |
| 4.3.1 苯菌灵和多菌灵抑制HTR-8细胞活性 | 第67页 |
| 4.3.2 苯菌灵和多菌灵影响HTR-8细胞周期分布 | 第67-69页 |
| 4.3.3 苯菌灵和多菌灵促进HTR-8细胞凋亡 | 第69-70页 |
| 4.3.4 苯菌灵和多菌灵抑制HTR-8细胞侵润 | 第70-71页 |
| 4.3.5 苯菌灵和多菌灵抑制HTR-8细胞迁移 | 第71-72页 |
| 4.3.6 苯菌灵和多菌灵对HTR-8细胞内MMPs、TIMPs、uPA、PAI-1 mRNA转录水平的的影响 | 第72-74页 |
| 4.3.7 苯菌灵和多菌灵对HTR-8细胞内integrin α5以及integrin β1 mRNA转录水平的影响 | 第74-75页 |
| 4.4 讨论 | 第75-77页 |
| 4.5 小结 | 第77-79页 |
| 5 三唑类杀菌剂戊唑醇对人胎盘滋养层细胞的毒性作用研究 | 第79-95页 |
| 5.1 前言 | 第79-80页 |
| 5.2 材料和方法 | 第80-84页 |
| 5.2.1 材料 | 第80页 |
| 5.2.2 细胞培养 | 第80页 |
| 5.2.3 MTS细胞活性实验 | 第80-81页 |
| 5.2.4 细胞周期检测 | 第81页 |
| 5.2.5 细胞凋亡检测 | 第81页 |
| 5.2.6 侵润实验检测 | 第81页 |
| 5.2.7 伤口愈合实验检测 | 第81-82页 |
| 5.2.8 Western blotting实验 | 第82页 |
| 5.2.9 实时荧光定量PCR | 第82-83页 |
| 5.2.10 数据处理 | 第83-84页 |
| 5.3 实验结果 | 第84-90页 |
| 5.3.1 戊唑醇抑制HTR-8细胞活性 | 第84页 |
| 5.3.2 戊唑醇影响HTR-8细胞周期分布 | 第84-85页 |
| 5.3.3 戊唑醇促进HTR-8细胞的凋亡 | 第85-87页 |
| 5.3.4 戊唑醇抑制HTR-8细胞的侵润和迁移 | 第87-88页 |
| 5.3.5 戊唑醇对HTR-8细胞内MMPs、TIMPs、uPA、PAI-1 mRNA转录水平的影响 | 第88-89页 |
| 5.3.6 戊唑醇对HTR-8细胞内VEGF、P1GF、α-hCG、β-hCG、HB-EGF、EGF、TNF-α和TGF-β1基因转录水平的影响 | 第89-90页 |
| 5.4 讨论 | 第90-92页 |
| 5.5 小结 | 第92-95页 |
| 6 结论 | 第95-99页 |
| 6.1 主要研究结论 | 第95-96页 |
| 6.2 论文创新点及特色 | 第96页 |
| 6.3 研究展望 | 第96-99页 |
| 参考文献 | 第99-123页 |
| 攻读博士学位期间发表或录用的文章 | 第123-125页 |
| 致谢 | 第125页 |
