| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-26页 |
| 1 鱼类性别决定研究进展 | 第11-14页 |
| ·遗传型性别决定 | 第11-12页 |
| ·环境型性别决定 | 第12-14页 |
| 2 鱼类性腺发育过程 | 第14-18页 |
| ·鱼类生殖细胞的发育 | 第14-15页 |
| ·鱼类性腺的分化与发育 | 第15-18页 |
| 3 鱼类性别相关基因 | 第18-24页 |
| ·Sox9基因 | 第18-19页 |
| ·Dmrt1基因 | 第19-20页 |
| ·细胞色素P450芳香化酶基因 | 第20-21页 |
| ·Amh基因 | 第21-22页 |
| ·Wt1基因 | 第22页 |
| ·Sf1基因 | 第22-23页 |
| ·Dax1基因 | 第23页 |
| ·Foxl2基因 | 第23-24页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第24-26页 |
| 第二章 乌鳢早期性腺发育的组织学观察 | 第26-32页 |
| 1 材料和方法 | 第26-27页 |
| ·实验样本 | 第26页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第26-27页 |
| ·实验方法 | 第27页 |
| 2 结果与分析 | 第27-30页 |
| 3 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 乌鳢Cyp19a1b和Foxl2基因的克隆和序列分析 | 第32-47页 |
| 1 材料和方法 | 第32-38页 |
| ·实验样本 | 第32页 |
| ·主要仪器设备 | 第32页 |
| ·药品和试剂 | 第32-33页 |
| ·引物设计 | 第33-34页 |
| ·实验方法 | 第34-38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-45页 |
| ·总RNA的提取 | 第38-39页 |
| ·乌鳢Cyp19a1b基因cDNA中间片段和3'端的克隆 | 第39页 |
| ·乌鳢Cyp19a1b基因序列分析 | 第39-42页 |
| ·乌鳢Foxl2基因cDNA全长的克隆 | 第42页 |
| ·乌鳢Foxl2基因序列分析 | 第42-45页 |
| 3 讨论 | 第45-47页 |
| ·乌鳢Cyp19a1b基因序列分析 | 第45页 |
| ·乌鳢Foxl2基因序列分析 | 第45-47页 |
| 第四章 乌鳢Cyp19a1b和Foxl2组织表达分布及个体早期发育阶段Foxl2表达分析 | 第47-57页 |
| 1 材料和方法 | 第47-51页 |
| ·实验样本 | 第47页 |
| ·主要仪器设备 | 第47页 |
| ·主要试剂和药品 | 第47页 |
| ·引物设计 | 第47-48页 |
| ·实验方法 | 第48-51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-54页 |
| ·乌鳢Cyp19a1b和Foxl2 mRNA组织表达 | 第51-53页 |
| ·乌鳢Foxl2 mRNA在个体早期发育阶段的表达 | 第53-54页 |
| 3 讨论 | 第54-57页 |
| ·乌鳢Cyp19a1b mRNA在不同组织中的表达 | 第54-55页 |
| ·乌鳢Foxl2 mRNA在不同组织中的表达 | 第55-56页 |
| ·乌鳢Foxl2 mRNA在个体早期发育阶段的表达 | 第56-57页 |
| 第五章 乌鳢成熟性腺中Foxl2蛋白的定位 | 第57-60页 |
| 1 材料和方法 | 第57-58页 |
| ·实验材料 | 第57页 |
| ·主要试剂 | 第57页 |
| ·实验方法 | 第57-58页 |
| 2 结果与分析 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-77页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
