| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 1 引言 | 第11-21页 |
| ·植物花对称性概述 | 第11-12页 |
| ·观赏植物花对称性调控的分子机理 | 第12-14页 |
| ·MYB转录因子家族特点 | 第14-15页 |
| ·花型改良基因工程研究 | 第15-16页 |
| ·菊科植物花对称性调控基因的克隆与表达 | 第16-18页 |
| ·本研究的设计思想 | 第18-21页 |
| ·研究的目的和意义 | 第18页 |
| ·研究内容 | 第18页 |
| ·技术路线 | 第18-21页 |
| 2 菊花‘毛香玉’花对称性调控基因克隆与序列分析 | 第21-39页 |
| ·实验材料 | 第21-22页 |
| ·植物材料 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21页 |
| ·试验引物 | 第21-22页 |
| ·实验方法 | 第22-29页 |
| ·菊花‘毛香玉’花序总RNA提取与质量检测 | 第22-23页 |
| ·第一链cDNA的合成 | 第23页 |
| ·CmDIV基因3'RACE克隆 | 第23-26页 |
| ·CmDIV基因5'RACE克隆 | 第26-27页 |
| ·CmDIV基因的克隆 | 第27-29页 |
| ·CmDIV基因生物信息学分析 | 第29页 |
| ·结果与分析 | 第29-38页 |
| ·总RNA的提取 | 第29-30页 |
| ·CmDIV基因克隆与序列测定 | 第30-32页 |
| ·CmDIV基因生物信息学分析 | 第32-38页 |
| ·讨论 | 第38-39页 |
| 3 CmDIV基因荧光定量表达分析 | 第39-47页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·植物材料与取样 | 第39页 |
| ·试剂 | 第39页 |
| ·主要仪器 | 第39页 |
| ·实验方法 | 第39-41页 |
| ·各样品总RNA提取及cDNA第一链的合成 | 第40页 |
| ·引物设计 | 第40页 |
| ·荧光定量PCR反应 | 第40-41页 |
| ·结果与分析 | 第41-44页 |
| ·总RNA提取检测 | 第41页 |
| ·溶解曲线分析 | 第41-42页 |
| ·CmDIV基因在菊花‘毛香玉’盛花期不同组织部位的表达 | 第42-43页 |
| ·CmDIV基因在菊花不同种与品种间的表达差异 | 第43-44页 |
| ·讨论 | 第44-47页 |
| 4 CmDIV基因转化拟南芥及表型观测 | 第47-57页 |
| ·试验材料与试剂 | 第47页 |
| ·试验材料与试剂 | 第47页 |
| ·试验方法 | 第47-51页 |
| ·CmDIV基因序列加酶切位点 | 第47页 |
| ·植物表达载体的构建 | 第47-48页 |
| ·农杆菌感受态的制备 | 第48-49页 |
| ·植物表达载体转化农杆菌 | 第49页 |
| ·拟南芥培养 | 第49页 |
| ·花序侵染法转化拟南芥及转基因株系鉴定 | 第49-51页 |
| ·结果与分析 | 第51-53页 |
| ·植物表达载体构建 | 第51页 |
| ·转基因拟南芥检测 | 第51-52页 |
| ·转基因拟南芥RT-PCR检测 | 第52页 |
| ·转基因拟南芥表型观测 | 第52-53页 |
| ·讨论 | 第53-57页 |
| 5 总结 | 第57-59页 |
| ·结论 | 第57页 |
| ·CmDIV基因克隆及分析 | 第57页 |
| ·CmDIV基因荧光定量及分析 | 第57页 |
| ·CmDIV基因转导拟南芥表型观测 | 第57页 |
| ·展望 | 第57-59页 |
| 本研究创新之处 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 个人简介 | 第67-69页 |
| 导师简介 | 第69-71页 |
| 获得成果 | 第71-73页 |
| 致谢 | 第73页 |