| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-20页 |
| ·生物胺的概述 | 第9-11页 |
| ·生物胺的种类及作用 | 第9-10页 |
| ·常见的生物胺 | 第10-11页 |
| ·生物胺氧化酶及其与生物胺的关系 | 第11-12页 |
| ·生物胺氧化酶的提取 | 第12-15页 |
| ·常用提取酶的方法 | 第12-14页 |
| ·双水相萃取法 | 第14-15页 |
| ·国内外生物胺氧化酶的研究现状 | 第15-16页 |
| ·本研究的意义和内容 | 第16-17页 |
| ·本研究的意义 | 第16页 |
| ·本研究的内容 | 第16-17页 |
| 参考文献 | 第17-20页 |
| 第二章 鼠李糖乳杆菌产生物胺氧化酶的最佳培养条件 | 第20-27页 |
| ·材料与方法 | 第20-21页 |
| ·材料 | 第20页 |
| ·仪器与试剂 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-21页 |
| ·结果与分析 | 第21-24页 |
| ·最佳培养时间 | 第21页 |
| ·最佳培养温度 | 第21-22页 |
| ·最佳氮源 | 第22页 |
| ·最佳碳源 | 第22-23页 |
| ·最佳初始p H | 第23页 |
| ·正交实验设计及分析 | 第23-24页 |
| ·讨论 | 第24-25页 |
| ·结论 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-27页 |
| 第三章 双水相萃取鼠李糖乳杆菌生物胺氧化酶条件优化的研究 | 第27-40页 |
| ·材料与方法 | 第27-29页 |
| ·材料 | 第27页 |
| ·试剂与仪器 | 第27页 |
| ·实验方法 | 第27-29页 |
| ·结果与分析 | 第29-37页 |
| ·聚乙二醇/硫酸铵双水相体系相图 | 第29-30页 |
| ·不同分子量的PEG对生物胺氧化酶萃取的影响 | 第30页 |
| ·不同浓度的PEG对萃取的影响 | 第30页 |
| ·不同浓度的硫酸铵对萃取的影响 | 第30-31页 |
| ·不同p H值对萃取的影响 | 第31页 |
| ·不同温度对萃取的影响 | 第31-32页 |
| ·响应面结果分析 | 第32-37页 |
| ·讨论 | 第37-38页 |
| ·结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-40页 |
| 第四章 对比鼠李糖乳杆菌生物胺氧化酶萃取前后氧化作用以及添加物对其氧化效果影响 | 第40-47页 |
| ·材料与方法 | 第40-42页 |
| ·材料 | 第40页 |
| ·仪器与试剂 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-42页 |
| ·结果与分析 | 第42-44页 |
| ·萃取前后生物胺氧化酶对八种生物胺氧化情况的对比 | 第42-43页 |
| ·添加葡萄糖对生物胺氧化酶氧化情况的影响 | 第43-44页 |
| ·讨论 | 第44-45页 |
| ·结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-47页 |
| 第五章 结论与展望 | 第47-49页 |
| ·结论 | 第47-48页 |
| ·鼠李糖乳杆菌产生生物胺氧化酶的最佳培养条件的研究 | 第47页 |
| ·双水相萃取鼠李糖乳杆菌生物胺氧化酶条件优化的研究 | 第47-48页 |
| ·对比鼠李糖乳杆菌生物胺氧化酶萃取前后氧化作用以及添加物对其氧化效果影响 | 第48页 |
| ·创新点 | 第48页 |
| ·展望 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 作者简介 | 第50-51页 |
| 附件 | 第51页 |
