| 缩写 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-11页 |
| 英文摘要 | 第11-12页 |
| 1 引言 | 第12-14页 |
| 2 材料与方法 | 第14-35页 |
| ·斑马鱼标本 | 第14-15页 |
| ·斑马鱼品系 | 第14页 |
| ·斑马鱼培养溶液的配制 | 第14-15页 |
| ·斑马鱼饲养 | 第15页 |
| ·斑马鱼活体共聚焦成像 | 第15-18页 |
| ·标本准备 | 第15-16页 |
| ·标本包埋 | 第16页 |
| ·活体共聚焦成像 | 第16-17页 |
| ·荧光能量共振转移(FRET)成像 | 第17-18页 |
| ·显微注射法 | 第18-19页 |
| ·反义吗啉环寡聚核苷酸(morpholino oligomer)制备 | 第19-21页 |
| ·整胚原位杂交 | 第21-24页 |
| ·探针制备 | 第21-22页 |
| ·胚胎固定 | 第22页 |
| ·胚胎复水化 | 第22页 |
| ·蛋白酶处理与后固定 | 第22页 |
| ·预杂交与杂交 | 第22页 |
| ·去除探针 | 第22-23页 |
| ·地高辛抗体检测 | 第23页 |
| ·碱性磷酸酶底物显色 | 第23页 |
| ·照相 | 第23-24页 |
| ·药物处理 | 第24页 |
| ·透射电镜制样与观察 | 第24页 |
| ·瞬时转基因质粒的制备 | 第24-25页 |
| ·转基因斑马鱼制备 | 第25-28页 |
| ·细胞移植 | 第28-29页 |
| ·电生理记录方法 | 第29-32页 |
| ·记录电极拉制 | 第29页 |
| ·溶液配制 | 第29-30页 |
| ·在体斑马鱼记录标本制备 | 第30-31页 |
| ·在体电生理记录 Mauthner 细胞方法 | 第31-32页 |
| ·统计分析 | 第32-33页 |
| ·药品及仪器 | 第33-35页 |
| 3 结果 | 第35-53页 |
| ·早期髓鞘化过程中髓鞘片段的生长与修剪 | 第35-47页 |
| ·髓鞘片段生长与修剪的现象 | 第35-38页 |
| ·髓鞘片段生长和修剪的动态特点 | 第38-40页 |
| ·髓鞘修剪跟轴突直径的相关性 | 第40-42页 |
| ·NRG1-ErbB 信号参与髓鞘修剪过程 | 第42-46页 |
| ·少突胶质细胞的 ErbB2 受体参与髓鞘修剪 | 第46-47页 |
| ·斑马鱼腹侧脊髓髓鞘生长的方向性 | 第47-53页 |
| ·斑马鱼腹侧脊髓的髓鞘生长具有方向性 | 第47-51页 |
| ·β-catenin 参与调节 Mauthner 细胞轴突髓鞘生长方向性 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| ·早期髓鞘化过程中髓鞘片段的生长与修剪 | 第53-54页 |
| ·斑马鱼腹侧脊髓髓鞘生长方向性 | 第54-55页 |
| ·结语 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 综述 轴突信号对少突胶质细胞发育过程的调节 | 第63-97页 |
| 参考文献 | 第86-97页 |
| 发表文章 | 第97-98页 |
| 作者简历 | 第98-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |