| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-21页 |
| 1 植物K~+营养与功能 | 第10页 |
| 2 AtCIPK23蛋白激酶及其功能 | 第10-13页 |
| 3 植物蛋白质组学 | 第13-19页 |
| ·蛋白组学主要研究方法 | 第14-16页 |
| ·双向电泳 | 第14-15页 |
| ·生物质谱技术 | 第15页 |
| ·蛋白质生物信息学分析 | 第15-16页 |
| ·马铃薯蛋白组学研究进展 | 第16-19页 |
| 4 研究目的与意义 | 第19-21页 |
| 第二章 马铃薯组培苗蛋白双向电泳体系建立 | 第21-31页 |
| 1 实验仪器、试剂与材料 | 第21页 |
| ·实验仪器、试剂与药品 | 第21页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| 2 实验方法与步骤 | 第21-27页 |
| ·实验材料培养与处理 | 第21-22页 |
| ·植物材料蛋白质提取 | 第22页 |
| ·蛋白浓度测定(Modified Bradford法) | 第22-23页 |
| ·SDS-PAGE单向检测 | 第23-24页 |
| ·双向电泳 | 第24-26页 |
| ·等电聚焦 | 第24-25页 |
| ·SDS-PAGE凝胶电泳(双向电泳第二向) | 第25-26页 |
| ·考马斯亮蓝染色 | 第26页 |
| ·凝胶扫描、图像分析 | 第26-27页 |
| 3 实验结果 | 第27-29页 |
| ·蛋白质浓度测定 | 第27页 |
| ·SDS-PAGE单向检测 | 第27-28页 |
| ·2-DE实验图谱 | 第28-29页 |
| 4 实验讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 转AtCIPK23基因马铃薯低钾胁迫蛋白质差异表达研究 | 第31-59页 |
| 1 实验仪器、试剂与材料 | 第31页 |
| ·实验仪器、试剂与药品 | 第31页 |
| ·实验材料 | 第31页 |
| 2 实验方法与步骤 | 第31-34页 |
| ·实验材料培养与处理 | 第31-32页 |
| ·植物蛋白提取 | 第32页 |
| ·蛋白浓度测定 | 第32页 |
| ·SDS-PAGE单向检测 | 第32页 |
| ·等电聚焦 | 第32页 |
| ·SDS-PAGE凝胶电泳 | 第32页 |
| ·考马斯亮蓝染色 | 第32页 |
| ·凝胶扫描、图像分析及切点 | 第32-33页 |
| ·质谱鉴定 | 第33页 |
| ·生物信息学分析 | 第33-34页 |
| ·数据库检索 | 第34页 |
| ·蛋白功能注释 | 第34页 |
| ·蛋白互作分析(protein-protein interaction PPI) | 第34页 |
| 3 实验结果 | 第34-47页 |
| ·马铃薯组培苗表型鉴定 | 第34页 |
| ·蛋白质浓度测定 | 第34-35页 |
| ·SDS-PAGE单向检测 | 第35-36页 |
| ·2-DE实验结果 | 第36-47页 |
| ·野生型正常条件与低钾胁迫2-DE对比结果 | 第36-39页 |
| ·野生型与转基因型马铃薯正常条件2-DE对比结果 | 第39-42页 |
| ·野生型与转基因型马铃薯低钾胁迫2-DE对比结果 | 第42-44页 |
| ·转基因型马铃薯正常条件与低钾胁迫2-DE对比结果 | 第44-47页 |
| 4 实验讨论 | 第47-59页 |
| ·野生型马铃薯组培苗低钾胁迫差异表达蛋白 | 第47-50页 |
| ·野生型与转基因型马铃薯正常水培差异表达蛋白 | 第50-52页 |
| ·野生型与转基因型马铃薯低钾胁迫差异表达蛋白 | 第52-55页 |
| ·转基因型低钾胁迫蛋白差异表达 | 第55页 |
| ·小结 | 第55-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
