| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-27页 |
| ·滑子菇 | 第14-16页 |
| ·食药用菌概述 | 第14-15页 |
| ·滑子菇的生物学特性 | 第15页 |
| ·滑子菇的营养价值和药用价值 | 第15-16页 |
| ·滑子菇的栽培现状和经济效益 | 第16页 |
| ·食药用真菌多糖的分离纯化和结构方法研究 | 第16-21页 |
| ·食药用真菌多糖的分离纯化方法 | 第16-19页 |
| ·提取 | 第17页 |
| ·分离 | 第17-18页 |
| ·纯化 | 第18-19页 |
| ·纯度鉴定 | 第19页 |
| ·食药用真菌多糖的结构方法研究 | 第19-21页 |
| ·食药用真菌多糖生物活性 | 第21-25页 |
| ·食药用真菌多糖功能与结构的关系 | 第21-22页 |
| ·食药用真菌多糖的生理功能 | 第22-25页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第22-23页 |
| ·免疫调节功能 | 第23页 |
| ·抗衰老 | 第23页 |
| ·抗病毒活性 | 第23-24页 |
| ·降血糖活性 | 第24-25页 |
| ·抗辐射作用 | 第25页 |
| ·其他活性 | 第25页 |
| ·本课题的研究意义和研究内容 | 第25-27页 |
| ·滑子菇多糖的研究意义 | 第25-26页 |
| ·研究内容 | 第26-27页 |
| 第二章 滑子菇多糖的提取工艺 | 第27-42页 |
| ·前言 | 第27页 |
| ·实验材料与设备 | 第27-28页 |
| ·实验材料与试剂 | 第27-28页 |
| ·实验仪器与设备 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-31页 |
| ·滑子菇营养成分的测定 | 第28-29页 |
| ·辅助超声提取滑子菇多糖的研究 | 第29-30页 |
| ·滑子菇多糖含量测定方法 | 第30-31页 |
| ·总糖含量采用苯酚-硫酸法 | 第30页 |
| ·还原糖含量采用 3,5-二硝基水杨酸法（DNS 法） | 第30-31页 |
| ·多糖含量及多糖得率的计算 | 第31页 |
| ·实验结果与讨论 | 第31-41页 |
| ·滑子菇营养成分的测定结果 | 第31-33页 |
| ·葡萄糖标准工作曲线 | 第33-34页 |
| ·苯酚-硫酸法葡萄糖标准曲线 | 第33页 |
| ·DNS 法还原糖标准曲线 | 第33-34页 |
| ·单因素实验结果及分析 | 第34-37页 |
| ·超声功率对多糖得率的影响 | 第34-35页 |
| ·超声时间对多糖得率的影响 | 第35-36页 |
| ·液料比对多糖得率的影响 | 第36-37页 |
| ·响应面分析法优化工艺 | 第37-41页 |
| ·响应面分析因素水平的选取 | 第37页 |
| ·响应面分析方案及结果 | 第37-39页 |
| ·因素间的交互影响 | 第39-40页 |
| ·超声辅助提取工艺条件的确定 | 第40-41页 |
| ·本章小结 | 第41-42页 |
| 第三章 滑子菇多糖的分离纯化及理化性质研究 | 第42-51页 |
| ·前言 | 第42页 |
| ·实验材料与设备 | 第42-44页 |
| ·实验材料与试剂 | 第42-43页 |
| ·主要仪器与设备 | 第43-44页 |
| ·实验方法 | 第44-46页 |
| ·滑子菇粗多糖的制备 | 第44-45页 |
| ·粗多糖的提取 | 第44-45页 |
| ·粗多糖的脱色 | 第45页 |
| ·粗多糖的脱蛋白 | 第45页 |
| ·滑子菇多糖的 DEAE 柱层析纯化 | 第45页 |
| ·滑子菇多糖的分子量测定及纯度鉴定 | 第45-46页 |
| ·分子量测定 | 第45页 |
| ·冻融分析 | 第45-46页 |
| ·滑子菇多糖的理化性质 | 第46页 |
| ·淀粉的测定 | 第46页 |
| ·总糖的测定 | 第46页 |
| ·糖醛酸的测定 | 第46页 |
| ·氨基己糖的测定 | 第46页 |
| ·多糖中氨基酸的测定 | 第46页 |
| ·实验结果与讨论 | 第46-50页 |
| ·滑子菇多糖的离子交换柱层析 | 第46-47页 |
| ·滑子菇多糖的分子量测定及纯度鉴定 | 第47-49页 |
| ·滑子菇多糖的理化性质 | 第49页 |
| ·多糖中氨基酸的测定 | 第49-50页 |
| ·本章小结 | 第50-51页 |
| 第四章 PNP 的结构分析 | 第51-67页 |
| ·前言 | 第51页 |
| ·实验材料与试剂 | 第51-52页 |
| ·主要仪器与设备 | 第52-53页 |
| ·实验方法 | 第53-55页 |
| ·单糖组成测定 | 第53页 |
| ·红外光谱分析（IR） | 第53页 |
| ·高碘酸氧化和 Smith 降解 | 第53-54页 |
| ·高碘酸氧化反应 | 第53-54页 |
| ·Smith 降解 | 第54页 |
| ·甲基化 | 第54页 |
| ·部分酸水解 | 第54-55页 |
| ·滑子菇多糖的核磁共振分析 | 第55页 |
| ·糖肽键连接方式分析 | 第55页 |
| ·β-消除反应 | 第55页 |
| ·多糖中氨基酸的测定 | 第55页 |
| ·刚果红实验 | 第55页 |
| ·碘-碘化钾反应 | 第55页 |
| ·实验结果与讨论 | 第55-66页 |
| ·单糖组成的分析 | 第55-57页 |
| ·红外光谱分析 | 第57页 |
| ·高碘酸氧化分析 | 第57-58页 |
| ·Sminth 降解分析 | 第58-59页 |
| ·甲基化分析 | 第59-62页 |
| ·部分酸水解分析 | 第62页 |
| ·核磁共振分析 | 第62-64页 |
| ·糖肽键连接方式 | 第64-65页 |
| ·刚果红实验 | 第65页 |
| ·碘-碘化钾反应 | 第65-66页 |
| ·本章小结 | 第66-67页 |
| 第五章 滑子菇多糖的生物活性研究 | 第67-79页 |
| ·前言 | 第67页 |
| ·实验材料与试剂 | 第67-68页 |
| ·主要仪器与设备 | 第68页 |
| ·实验方法 | 第68-72页 |
| ·PNP 的抗氧化活性 | 第68-69页 |
| ·清除 DPPH·自由基的测定 | 第68-69页 |
| ·清除 O2-·自由基 | 第69页 |
| ·清除·OH 自由基 | 第69页 |
| ·还原能力测定 | 第69页 |
| ·PNP 的抗补体活性 | 第69-70页 |
| ·PNP 对小鼠腹腔巨噬细胞 RAW264.7 的影响 | 第70-71页 |
| ·PNP 对巨噬细胞的毒性作用 | 第70-71页 |
| ·PNP 对巨噬细胞吞噬中性红能力的影响 | 第71页 |
| ·PNP 对巨噬细胞产生 NO 的影响 | 第71页 |
| ·PNP 对巨噬细胞产生 H2O2的影响 | 第71页 |
| ·PNP 对巨噬细胞产生 IL-6 的影响 | 第71页 |
| ·PNP 对人肝癌细胞 Hep 2B 和前列腺癌 22Rv.1 增殖的抑制作用 | 第71-72页 |
| ·实验结果与讨论 | 第72-78页 |
| ·PNP 对抗氧化活性的影响 | 第72页 |
| ·PNP 对抗补体活性的影响 | 第72-74页 |
| ·PNP 对小鼠腹腔巨噬细胞 RAW264.7 的影响 | 第74-77页 |
| ·PNP 对巨噬细胞的毒性作用 | 第74页 |
| ·PNP 对巨噬细胞吞噬中性红能力的影响 | 第74-75页 |
| ·PNP 对小鼠腹腔巨噬细胞分泌 NO、H2O2的影响 | 第75页 |
| ·PNP 对小鼠腹腔巨噬细胞产生 IL-6 的影响 | 第75-77页 |
| ·PNP 对前列腺癌 22Rv.1 和肝癌 Hep 2B 细胞的抑制作用 | 第77-78页 |
| ·本章小结 | 第78-79页 |
| 结论与展望 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-90页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 附件 | 第92页 |
