| 英文缩略词表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-15页 |
| 引言 | 第15-18页 |
| 第一部分 糖尿病并发抑郁症动物模型的建立 | 第18-52页 |
| 1 实验材料 | 第18-20页 |
| ·主要试剂 | 第18-19页 |
| ·主要溶液与缓冲液 | 第19-20页 |
| ·主要仪器 | 第20页 |
| 2 实验方法 | 第20-32页 |
| ·实验动物及分组 | 第20-21页 |
| ·模型的建立方法 | 第21页 |
| ·实验性糖尿病动物模型的建立 | 第21页 |
| ·慢性应激方法 | 第21页 |
| ·指标测定 | 第21-31页 |
| ·行为学实验 | 第21-22页 |
| ·血糖、血脂指标测定 | 第22-23页 |
| ·HPA轴内分泌相关指标测定 | 第23页 |
| ·组织病理学检测 | 第23-24页 |
| ·免疫组化检测 | 第24-25页 |
| ·海马11β-HSD1和GR的Western-blotting检测 | 第25-29页 |
| ·海马11β-HSD1和GR的RT-PCR检测 | 第29-31页 |
| ·统计学处理 | 第31-32页 |
| 3 实验结果 | 第32-42页 |
| ·大鼠一般情况观察 | 第32页 |
| ·体质量变化情况 | 第32-33页 |
| ·Open-field实验 | 第33-34页 |
| ·Morris水迷宫实验 | 第34页 |
| ·血糖、血脂、胰岛素指标测定 | 第34-36页 |
| ·HPA轴内分泌相关指标测定 | 第36页 |
| ·组织病理检测 | 第36-39页 |
| ·海马形态学变化 | 第36-37页 |
| ·下丘脑形态学变化 | 第37页 |
| ·垂体形态学变化 | 第37-38页 |
| ·大鼠肾上腺形态学变化 | 第38页 |
| ·GR、11β-HSD1的免疫组化检测 | 第38-39页 |
| ·海马11β-HSD1和GR的Western-blotting检测 | 第39-40页 |
| ·海马11β-HSD1和GR的RT-PCR检测 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-52页 |
| ·DD动物建模方法的选择 | 第42-43页 |
| ·DD动物模型评价指标的确立 | 第43-46页 |
| ·糖尿病样指标评价 | 第44-45页 |
| ·抑郁样指标评价 | 第45-46页 |
| ·DD大鼠HPA轴功能紊乱致海马损伤机制的研究 | 第46-49页 |
| ·DD大鼠海马GR和11β-HSD1表达的变化 | 第49-52页 |
| 第二部分 左归降糖解郁方对DD大鼠的干预作用 | 第52-66页 |
| 1 实验材料 | 第52页 |
| ·主要试剂 | 第52页 |
| ·主要溶液与缓冲液 | 第52页 |
| ·主要仪器 | 第52页 |
| 2 实验方法 | 第52-54页 |
| ·实验动物及分组 | 第52-53页 |
| ·糖尿病并发抑郁症动物模型的建立 | 第53页 |
| ·指标检测 | 第53页 |
| ·统计学处理 | 第53-54页 |
| 3 实验结果 | 第54-62页 |
| ·体质量变化情况 | 第54页 |
| ·Open-field实验 | 第54-55页 |
| ·Morris水迷宫实验 | 第55-56页 |
| ·血糖、血脂、胰岛素指标测定 | 第56-57页 |
| ·HPA轴内分泌相关指标测定 | 第57页 |
| ·组织病理检测 | 第57-60页 |
| ·海马形态学变化 | 第57-58页 |
| ·下丘脑形态学变化 | 第58-59页 |
| ·垂体形态学变化 | 第59页 |
| ·大鼠肾上腺形态学变化 | 第59-60页 |
| ·GR、11β-HSD1的免疫组化检测 | 第60-61页 |
| ·11β-HSD1和GR的Western-blotting检测 | 第61-62页 |
| 4 讨论 | 第62-66页 |
| ·左归降糖解郁方的组方原则及药物配伍意义 | 第62-64页 |
| ·左归降糖解郁方对DD大鼠的保护作用 | 第64-66页 |
| 结论 | 第66-68页 |
| 创新点 | 第68-70页 |
| 不足之处及下一步研究方向 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 附录 | 第79-95页 |
| 综述 | 第79-95页 |
| 参考文献 | 第90-95页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第95-96页 |
| 攻读硕士期间参与的课题 | 第96-97页 |
| 攻读硕士期间获得的奖励 | 第97页 |
