| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第6-9页 |
| 序言 | 第9-17页 |
| 1 香蕉生物技术研究现状 | 第9-15页 |
| ·香蕉种质资源 | 第10页 |
| ·种 | 第10页 |
| ·香蕉再生体系研究进展 | 第10-12页 |
| ·香蕉遗传转化体系研究进展 | 第12-14页 |
| ·遗传转化体系常用方法 | 第12页 |
| ·遗传转化受体材料 | 第12-13页 |
| ·不同农杆菌对转化材料的效果 | 第13页 |
| ·农杆菌的活化 | 第13页 |
| ·启动子 | 第13-14页 |
| ·脯氨酸与硝酸银 | 第14页 |
| ·香蕉有益功能基因的研究 | 第14-15页 |
| 2 研究目的与意义 | 第15-16页 |
| 3 技术路线 | 第16-17页 |
| 材料和方法 | 第17-28页 |
| 1 材料 | 第17-18页 |
| ·外植体材料 | 第17页 |
| ·菌种与质粒 | 第17页 |
| ·试剂 | 第17-18页 |
| ·主要仪器设备 | 第18页 |
| 2 巴西蕉雄花和香蕉假茎切片胚性愈伤组织的诱导 | 第18-22页 |
| ·外植体表面消毒及处理 | 第18页 |
| ·愈伤诱导培养基及培养条件 | 第18-22页 |
| 3 农杆菌介导巴西蕉茎微盘遗传转化体系的研究 | 第22-24页 |
| ·巴西蕉茎微盘出芽率实验 | 第22页 |
| ·培养基配方 | 第22页 |
| ·抑菌剂和筛选剂对巴西蕉茎微盘分生组织出芽率的影响 | 第22-23页 |
| ·农杆菌侵染条件的优化 | 第23-24页 |
| 4. 本实验巴西蕉茎微盘分生组织遗传转化的过程 | 第24-28页 |
| ·培养基的配方 | 第24-25页 |
| ·农杆菌菌液的准备 | 第25页 |
| ·农杆菌浸染材料和共培养 | 第25页 |
| ·抑菌培养 | 第25-26页 |
| ·转化材料的筛选 | 第26页 |
| ·抗性苗的生根与栽培 | 第26页 |
| ·抗性苗目的基因的检测 | 第26-28页 |
| 结果与分析 | 第28-40页 |
| 1 巴西蕉低代试管苗茎微盘分生组织薄层切片的出芽率 | 第28页 |
| 2 香蕉间接器官发生体系的研究 | 第28-29页 |
| 3 不同抑菌剂和筛选剂对香蕉受体系统以及农杆菌的影响 | 第29-34页 |
| ·抑菌剂对巴西蕉低代试管苗茎微盘分生组织薄层切片芽再生的影响 | 第29-33页 |
| ·筛选剂对巴西蕉低代试管苗茎微盘薄层切片芽再生的影响 | 第33-34页 |
| 4 根瘤农杆菌遗传转化条件主要因子的优化 | 第34-37页 |
| ·农杆菌菌液浓度对GUS基因瞬时表达率的影响 | 第34-35页 |
| ·侵染时间对GUS基因瞬时表达率的影响 | 第35-36页 |
| ·共培养时间对GUS基因瞬时表达率的影响 | 第36页 |
| ·巴西蕉低代试管苗茎微盘横切薄片的侵染及GUS基因瞬时表达的情况 | 第36-37页 |
| 5 农杆菌GUS基因转化巴西蕉茎微盘分生组织切片的筛选结果 | 第37-40页 |
| ·转化材料的筛选 | 第37-38页 |
| ·转化材料筛选后的再生与移栽 | 第38-39页 |
| ·抗性植株GUS基因PCR结果 | 第39页 |
| ·抗性苗GUS基因染色结果 | 第39-40页 |
| 讨论 | 第40-42页 |
| 1 香蕉遗传转化受体系统 | 第40-41页 |
| 2 抑菌剂和筛选剂对农杆菌以及香蕉茎微盘分生组织的影响 | 第41页 |
| 3 农杆菌侵染条件的优化 | 第41-42页 |
| 结论 | 第42页 |
| 展望 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-45页 |
| 附录 | 第45-47页 |
| 致谢 | 第47页 |
