摘要 | 第1-4页 |
ABSTRACT | 第4-9页 |
第1章 综述 | 第9-20页 |
·乳腺癌 | 第9页 |
·植物雌激素 | 第9-10页 |
·植物雌激素的分类和分布 | 第9-10页 |
·关于大豆异黄酮(GST) | 第10-11页 |
·大豆异黄酮(GST)的分子结构,雌激素活性及在体内的代谢过程 | 第10页 |
·大豆异黄酮(GST)的生物学作用 | 第10-11页 |
·关于大豆异黄酮(GST)的流行病学研究 | 第11页 |
·体外实验中大豆异黄酮(GST)的分子靶位及作用效果 | 第11-15页 |
·大豆异黄酮(GST)对细胞周期调控的影响 | 第12页 |
·大豆异黄酮(GST)对细胞凋亡的调控 | 第12-13页 |
·大豆异黄酮(GST)对细胞核因子 kB(NF-kB)的抑制作用 | 第13-14页 |
·大豆异黄酮(GST)在调节 Akt 信号传导通路中的作用 | 第14页 |
·大豆异黄酮(GST)在调节 MAPK 途径中的作用 | 第14页 |
·大豆异黄酮(GST)的抗氧化作用 | 第14-15页 |
·大豆异黄酮(GST)对其他信号转导途径的调节作用 | 第15页 |
·大豆异黄酮(GST)在体内的抗肿瘤作用 | 第15-16页 |
·大豆异黄酮(GST)在动物实验中的抗肿瘤作用 | 第15-16页 |
·大豆异黄酮(GST)在体内的抗氧化作用 | 第16页 |
·大豆异黄酮(GST)在抗肿瘤血管生成和远处转移中的作用 | 第16-18页 |
·大豆异黄酮(GST)在肿瘤治疗中的作用 | 第18页 |
·大豆异黄酮(GST)的相关性研究 | 第18-19页 |
·问题与展望 | 第19-20页 |
第2章 前言 | 第20-22页 |
第3章 注射用 GST/PLGA 长效缓释微球的制备 | 第22-30页 |
·主要实验设备 | 第22-23页 |
·主要实验试剂 | 第23页 |
·PLGA 空白微球的制备 | 第23页 |
·GST/PLGA 缓释微球的制备 | 第23页 |
·微球的质量评价 | 第23-30页 |
·微球的形态观察和粒径测量 | 第23页 |
·微球产率的测定 | 第23-24页 |
·微球载药量和包封率的测定 | 第24-25页 |
·微球的药物代谢动力学检测 | 第25-30页 |
第4章 材料与方法 | 第30-36页 |
·研究对象及设施 | 第30-31页 |
·实验动物 | 第30页 |
·实验动物饲育情况 | 第30-31页 |
·主要实验设备 | 第31页 |
·主要实验试剂 | 第31-32页 |
·实验步骤 | 第32页 |
·实验饲料中 GST 含量的测定及 GST 缓释微球剂量的计算 | 第32页 |
·实验动物分组 | 第32页 |
·观察指标 | 第32-33页 |
·小鼠的生长情况,体重变化,乳腺肿瘤的潜伏期以及乳腺肿瘤的发瘤率 | 第32-33页 |
·小鼠乳腺肿瘤的形态学观察 | 第33页 |
·实验步骤 | 第33-35页 |
·标本处理 | 第33页 |
·HE 染色步骤 | 第33-34页 |
·免疫组化染色步骤 | 第34-35页 |
·阳性结果判定 | 第35页 |
·统计学方法 | 第35-36页 |
第5章 结果 | 第36-42页 |
·各实验组小鼠生长情况 | 第36页 |
·各实验组小鼠乳腺肿瘤潜伏期 | 第36-37页 |
·各实验组小鼠乳腺肿瘤发瘤率 | 第37-38页 |
·各实验小组乳腺肿瘤生长情况 | 第38-39页 |
·各实验组小鼠肿瘤发生位置 | 第38页 |
·各实验组小鼠肿瘤最大直径 | 第38-39页 |
·各实验组小鼠乳腺肿瘤组织 HE 染色及免疫组织化学染色结果 | 第39-42页 |
·各实验组乳腺肿瘤组织 HE 染色结果 | 第39页 |
·乳腺肿瘤组织与正常乳腺组织免疫组织化学染色结果 | 第39-40页 |
·各实验组乳腺肿瘤组织免疫组织化学染色结果 | 第40页 |
·乳腺肿瘤组织中 MMP-2 与 TIMP-2 表达的相关性 | 第40-41页 |
·正常乳腺组织中 MMP-2 和 TIMP-2 表达的相关性 | 第41-42页 |
第6章 讨论 | 第42-46页 |
·GST 对小鼠乳腺肿瘤生长干预效果的分析 | 第42-44页 |
·GST 对小鼠乳腺组织中 MMP-2 及 TIMP-2 表达效果的分析 | 第44-45页 |
·研究展望 | 第45-46页 |
第7章 结论 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-56页 |
缩略语词汇表 | 第56-57页 |
附录A 图片 | 第57-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
攻读硕士学位期间的研究成果 | 第63页 |