| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-24页 |
| ·小麦穗形态发育模式及变异类型研究现状 | 第13-15页 |
| ·玉米ramosa 基因通路研究 | 第15-16页 |
| ·小麦基因克隆研究 | 第16-18页 |
| ·同源克隆 | 第17页 |
| ·图位克隆 | 第17页 |
| ·抑制差减杂交 | 第17-18页 |
| ·mRNA 差异显示 | 第18页 |
| ·LBD 基因家族在高等植物中的研究 | 第18-20页 |
| ·LBD 基因的结构域特征 | 第19页 |
| ·LBD 基因的功能 | 第19-20页 |
| ·转基因沉默技术研究 | 第20-21页 |
| ·转基因沉默 | 第20-21页 |
| ·RNA 干涉 | 第21页 |
| ·小麦转基因研究方法 | 第21-23页 |
| ·基因枪法 | 第21-22页 |
| ·农杆菌介导法 | 第22-23页 |
| ·花粉管通道法 | 第23页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 第二章 TtRa2 的同源克隆 | 第24-32页 |
| ·材料 | 第24页 |
| ·植物材料 | 第24页 |
| ·宿主菌、克隆载体及分子生物学试剂 | 第24页 |
| ·主要培养基及试剂 | 第24页 |
| ·方法 | 第24-26页 |
| ·DNA 与RNA 的提取 | 第24页 |
| ·TtRa2 的克隆 | 第24-25页 |
| ·TtRa2 的组织特异性分析 | 第25-26页 |
| ·结果与分析 | 第26-31页 |
| ·TtRa2 的扩增及组织特异性分析 | 第26-27页 |
| ·TtRA2 序列和结构域分析 | 第27-29页 |
| ·TtRA2 的进化分析 | 第29-31页 |
| ·讨论 | 第31-32页 |
| 第三章 TtRa2 的原核表达及其重组蛋白的DNA 特异结合分析 | 第32-40页 |
| ·材料 | 第32-35页 |
| ·目的基因 | 第32页 |
| ·宿主菌、表达载体及分子生物学试剂 | 第32页 |
| ·主要试剂 | 第32-34页 |
| ·主要仪器 | 第34-35页 |
| ·实验方法 | 第35-36页 |
| ·重组表达载体的构建与鉴定 | 第35页 |
| ·TtRa2 诱导表达及亲和纯化 | 第35页 |
| ·凝胶迁移阻滞试验 | 第35-36页 |
| ·结果与分析 | 第36-39页 |
| ·重组表达载体的鉴定 | 第36-37页 |
| ·TtRA2 的表达纯化分析 | 第37页 |
| ·TtRA2 与特异DNA 序列结合能力的测定 | 第37-39页 |
| ·讨论 | 第39-40页 |
| 第四章 小麦成熟胚、幼胚离体再生培养体系优化及筛选体系建立 | 第40-46页 |
| ·材料和方法 | 第40-41页 |
| ·材料 | 第40页 |
| ·组织培养所用培养基 | 第40页 |
| ·小麦外植体培养 | 第40-41页 |
| ·小麦幼胚培养 | 第40页 |
| ·小麦成熟胚培养 | 第40-41页 |
| ·结果统计计算 | 第41页 |
| ·结果与分析 | 第41-44页 |
| ·幼胚愈伤组织诱导及分化 | 第41-42页 |
| ·成熟胚愈伤组织诱导及分化 | 第42-44页 |
| ·不同浓度NAA 对再生植株生根状况的影响 | 第44页 |
| ·讨论 | 第44-46页 |
| 第五章 ramosa2 和ramosa3 基因RNAi 载体的转化 | 第46-53页 |
| ·材料和方法 | 第46-48页 |
| ·材料 | 第46页 |
| ·供试小麦品种 | 第46页 |
| ·培养基 | 第46页 |
| ·方法 | 第46-48页 |
| ·RNAi 表达载体pAHC-ra2 及pAHC-ra3 的构建 | 第46-47页 |
| ·愈伤组织准备及基因枪转化 | 第47-48页 |
| ·受体材料对除草剂敏感性实验 | 第48页 |
| ·转化后愈伤组织分化成苗 | 第48页 |
| ·结果与分析 | 第48-51页 |
| ·愈伤组织的转化及再生 | 第48-49页 |
| ·不同浓度Basta 对小麦离体培养的影响 | 第49-50页 |
| ·转基因再生植株表型 | 第50-51页 |
| ·讨论 | 第51-53页 |
| 第六章 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62页 |
