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CUEDC2各种缺失突变体的构建及其功能初探

摘要第1-9页
Abstract第9-11页
引言第11-13页
第一部分 克隆构建及表达检测第13-25页
 材料与方法第13-20页
  1.材料及来源第13-14页
   ·细胞株、菌株及质粒第13页
   ·主要试剂第13页
   ·细胞培养试剂第13-14页
   ·抗体第14页
   ·大型仪器第14页
  2.实验方法第14-20页
   ·GST-CUEDC2缺失突变表达载体的构建及鉴定第14-17页
     ·GST-CUEDC2缺失突变表达载体的引物设计第14-15页
     ·PCR扩增目的片段第15-16页
     ·酶切PCR产物和载体第16页
     ·连接第16页
     ·大肠杆菌的转化第16-17页
     ·质粒提取、酶切片段的鉴定第17页
   ·Flag-CUEDC2各种缺失突变表达载体的构建及鉴定第17页
   ·IKKβ缺失突变表达载体的构建及鉴定第17-18页
   ·3×Flag-CUEDC2和3×Flag-PP1的构建第18页
   ·细胞转染第18页
   ·Western blot分析第18-20页
 结果与讨论第20-24页
  1.GST-CUEDC2缺失突变表达载体的鉴定第20页
  2.Flag-CUEDC2缺失突变表达载体的酶切鉴定及表达鉴定第20-22页
   ·Flag-CUEDC2缺失突变表达载体的鉴定第20-21页
   ·Flaz-CUEDC2缺失突变在293T细胞中表达鉴定第21-22页
  3.IKKα和IKKβ缺失突变表达载体的酶切鉴定及表达鉴定第22-23页
   ·IKKα和IKKβ缺失突变表达载体的鉴定第22页
   ·IKKα和IKKβ缺失突变表达载体在293T细胞中表达的鉴定第22-23页
   ·×Flaz-CUEDC2和3×Flag-PP1表达载体的鉴定第23-24页
 小结第24-25页
第二部分 CUEDC2与IKKα/β的相互作用及相互作用区域第25-33页
 材料与方法第25-28页
  1 试剂、材料及仪器第25-26页
   ·质粒、菌株、细胞株第25页
   ·主要试剂第25页
   ·细胞培养试剂第25-26页
   ·抗体第26页
   ·大型仪器第26页
  2.实验方法第26-28页
   ·293T细胞瞬时转染第26页
   ·GST融合蛋白在大肠杆菌中的表达第26-27页
   ·GST沉淀(pull-down)分析第27-28页
 结果与讨论第28-32页
  1.GST pull-down验证CUEDC2与IKKα/β相互作用第28-29页
  2 GST-CUEDC2融合蛋白的诱导表达与纯化第29-30页
  3.GST pull-down实验确定CUEDC2与IKKα的相互作用区域第30-31页
  4.CUEDC2与IKKα相互作用示意图第31-32页
 小结第32-33页
第三部分 CUEDC2抑制TNFα及IL-1激活对NF-κ B通路第33-43页
 材料与方法第33-36页
  1 材料第33-34页
   ·细胞株、质粒第33-34页
   ·试剂及仪器第34页
  2方法第34-36页
   ·细胞转染第34页
   ·荧光素酶活性测定第34页
   ·Western blot分析第34-36页
 结果与讨论第36-42页
  1.CUEDC2过表达抑制TNFα和IL-1β对NF-κ B的转录激活第36-38页
   ·293T细胞中CUEDC2过表达抑制TNFα对NF-κ B转录激活第36页
   ·Hela细胞中CUEDC2过表达抑制TNFα对NF-κ B转录激活第36-37页
   ·过表达CUEDC2抑制IL-1β对NF-κ B的转录激活第37-38页
  2.稳定转染CUEDC2的细胞中TNFα和IL-1β对NF-κ B的转录激活第38-39页
  3.CUEDC2在IKK水平影响NF-κ B转录活性第39-40页
  4.CUEDC2对持续激活型IKKβ刺激的NF-κ B转录活性没有影响第40-42页
 小结第42-43页
总结第43-45页
参考文献第45-47页
致谢第47-48页
附录第48-62页
 英文缩略词第48-50页
 文章交流与发表第50-62页

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