| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTARCT | 第8-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-22页 |
| ·干细胞 | 第14页 |
| ·间质干细胞 | 第14-16页 |
| ·MSC的来源 | 第14页 |
| ·MSC的分离培养方法 | 第14-15页 |
| ·MSC的生物学特性 | 第15页 |
| ·MSC应用的优点 | 第15-16页 |
| ·MSC标记 | 第16-18页 |
| ·GFP标记技术 | 第16页 |
| ·荧光原位杂交技术 | 第16-17页 |
| ·PKH26标记技术 | 第17页 |
| ·DAPI标记技术 | 第17页 |
| ·5-溴脱氧尿嘧啶核苷标记技术 | 第17-18页 |
| ·MSC可塑性机制和意义 | 第18-19页 |
| ·MSC的可塑性 | 第18页 |
| ·MSC可塑性机制 | 第18-19页 |
| ·MSC可塑性的意义 | 第19页 |
| ·MSC与肾脏疾病 | 第19-21页 |
| ·MSC在肾脏疾病中的作用 | 第19-20页 |
| ·MSC作为转基因载体治疗肾脏疾病 | 第20页 |
| ·MSC移植治疗的机制及存在的问题 | 第20-21页 |
| ·MSC临床应用展望 | 第21-22页 |
| 第二章 研究目的、方法、实验设计方案和意义 | 第22-26页 |
| ·研究目的 | 第22页 |
| ·研究方法 | 第22-23页 |
| ·实验设计方案 | 第23-24页 |
| ·研究意义 | 第24-26页 |
| 第三章 PKH26、DAPI标记大鼠骨髓间质干细胞的实验研究 | 第26-40页 |
| ·试剂与仪器 | 第26-27页 |
| ·主要试剂 | 第26-27页 |
| ·主要仪器 | 第27页 |
| ·方法 | 第27-29页 |
| ·MSC的分离和培养 | 第27-28页 |
| ·PKH26、DAPI标记MSC | 第28页 |
| ·细胞动力学检测 | 第28页 |
| ·流式细胞分析 | 第28页 |
| ·诱导标记MSC分化成骨细胞及细胞化学染色 | 第28-29页 |
| ·RT-PCR | 第29页 |
| ·结果 | 第29-37页 |
| ·MSC形态学特点 | 第29页 |
| ·染色结果 | 第29页 |
| ·细胞动力学检测 | 第29页 |
| ·标记MSC传代特征 | 第29-30页 |
| ·诱导成骨细胞的ALP染色和VonKossa染色 | 第30页 |
| ·Nucleostemin,Bmi-1和BMP3基因表达 | 第30-37页 |
| ·讨论 | 第37-40页 |
| 第四章 骨髓间质干细胞在大鼠急性肾功能衰竭中的作用研究 | 第40-52页 |
| ·材料和方法 | 第40-43页 |
| ·材料 | 第40页 |
| ·主要试剂 | 第40-41页 |
| ·主要仪器 | 第41页 |
| ·方法 | 第41-43页 |
| ·结果 | 第43-49页 |
| ·MSC分离和培养 | 第43页 |
| ·大鼠ARF模型建立 | 第43-44页 |
| ·DAPI标记的大鼠MSC在ARF大鼠体内定位实验 | 第44页 |
| ·胎儿MSC在ARF大鼠体内定位实验 | 第44页 |
| ·治疗效果 | 第44页 |
| ·治疗机制 | 第44-49页 |
| ·讨论 | 第49-52页 |
| 第五章 体外诱导大鼠骨髓间质干细胞分化为肾小管样上皮细胞的研究 | 第52-62页 |
| ·材料和方法 | 第52-54页 |
| ·材料 | 第52页 |
| ·主要试剂 | 第52页 |
| ·主要仪器 | 第52-53页 |
| ·方法 | 第53-54页 |
| ·结果 | 第54-59页 |
| ·大鼠MSC的分离和培养 | 第54页 |
| ·大鼠ARF模型建立 | 第54页 |
| ·共培养后细胞形态学变化 | 第54页 |
| ·共培养后细胞肾小管上皮细胞特异性基因表达变化 | 第54页 |
| ·荧光定量PCR鉴定共培养后细胞CK18表达 | 第54-59页 |
| ·讨论 | 第59-62页 |
| 结论及展望 | 第62-64页 |
| 一、结论 | 第62页 |
| 二、展望 | 第62-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 攻读硕士学位期间获奖及发表的学术论文 | 第72-73页 |
