摘要 | 第1-8页 |
ABSTARCT | 第8-14页 |
第一章 绪论 | 第14-22页 |
·干细胞 | 第14页 |
·间质干细胞 | 第14-16页 |
·MSC的来源 | 第14页 |
·MSC的分离培养方法 | 第14-15页 |
·MSC的生物学特性 | 第15页 |
·MSC应用的优点 | 第15-16页 |
·MSC标记 | 第16-18页 |
·GFP标记技术 | 第16页 |
·荧光原位杂交技术 | 第16-17页 |
·PKH26标记技术 | 第17页 |
·DAPI标记技术 | 第17页 |
·5-溴脱氧尿嘧啶核苷标记技术 | 第17-18页 |
·MSC可塑性机制和意义 | 第18-19页 |
·MSC的可塑性 | 第18页 |
·MSC可塑性机制 | 第18-19页 |
·MSC可塑性的意义 | 第19页 |
·MSC与肾脏疾病 | 第19-21页 |
·MSC在肾脏疾病中的作用 | 第19-20页 |
·MSC作为转基因载体治疗肾脏疾病 | 第20页 |
·MSC移植治疗的机制及存在的问题 | 第20-21页 |
·MSC临床应用展望 | 第21-22页 |
第二章 研究目的、方法、实验设计方案和意义 | 第22-26页 |
·研究目的 | 第22页 |
·研究方法 | 第22-23页 |
·实验设计方案 | 第23-24页 |
·研究意义 | 第24-26页 |
第三章 PKH26、DAPI标记大鼠骨髓间质干细胞的实验研究 | 第26-40页 |
·试剂与仪器 | 第26-27页 |
·主要试剂 | 第26-27页 |
·主要仪器 | 第27页 |
·方法 | 第27-29页 |
·MSC的分离和培养 | 第27-28页 |
·PKH26、DAPI标记MSC | 第28页 |
·细胞动力学检测 | 第28页 |
·流式细胞分析 | 第28页 |
·诱导标记MSC分化成骨细胞及细胞化学染色 | 第28-29页 |
·RT-PCR | 第29页 |
·结果 | 第29-37页 |
·MSC形态学特点 | 第29页 |
·染色结果 | 第29页 |
·细胞动力学检测 | 第29页 |
·标记MSC传代特征 | 第29-30页 |
·诱导成骨细胞的ALP染色和VonKossa染色 | 第30页 |
·Nucleostemin,Bmi-1和BMP3基因表达 | 第30-37页 |
·讨论 | 第37-40页 |
第四章 骨髓间质干细胞在大鼠急性肾功能衰竭中的作用研究 | 第40-52页 |
·材料和方法 | 第40-43页 |
·材料 | 第40页 |
·主要试剂 | 第40-41页 |
·主要仪器 | 第41页 |
·方法 | 第41-43页 |
·结果 | 第43-49页 |
·MSC分离和培养 | 第43页 |
·大鼠ARF模型建立 | 第43-44页 |
·DAPI标记的大鼠MSC在ARF大鼠体内定位实验 | 第44页 |
·胎儿MSC在ARF大鼠体内定位实验 | 第44页 |
·治疗效果 | 第44页 |
·治疗机制 | 第44-49页 |
·讨论 | 第49-52页 |
第五章 体外诱导大鼠骨髓间质干细胞分化为肾小管样上皮细胞的研究 | 第52-62页 |
·材料和方法 | 第52-54页 |
·材料 | 第52页 |
·主要试剂 | 第52页 |
·主要仪器 | 第52-53页 |
·方法 | 第53-54页 |
·结果 | 第54-59页 |
·大鼠MSC的分离和培养 | 第54页 |
·大鼠ARF模型建立 | 第54页 |
·共培养后细胞形态学变化 | 第54页 |
·共培养后细胞肾小管上皮细胞特异性基因表达变化 | 第54页 |
·荧光定量PCR鉴定共培养后细胞CK18表达 | 第54-59页 |
·讨论 | 第59-62页 |
结论及展望 | 第62-64页 |
一、结论 | 第62页 |
二、展望 | 第62-64页 |
致谢 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-72页 |
攻读硕士学位期间获奖及发表的学术论文 | 第72-73页 |