施氏鲟的性腺发育及人工性别控制研究
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-13页 |
| 1 绪论 | 第13-34页 |
| ·研究目的和意义 | 第13-14页 |
| ·鲟鱼概述 | 第14-16页 |
| ·鲟鱼的分类地位和种类 | 第14页 |
| ·世界及我国鲟鱼资源状况 | 第14-15页 |
| ·施氏鲟的形态及生态习性 | 第15-16页 |
| ·鱼类生殖生理学的研究进展 | 第16-34页 |
| ·鱼类的卵巢结构及卵子发育的研究进展 | 第16-20页 |
| ·鱼类的精巢结构及精子发生的研究进展 | 第20-23页 |
| ·鱼类性分化的研究现状 | 第23-28页 |
| ·国内外鲟鱼生殖生理学的研究进展 | 第28-34页 |
| 2 材料与方法 | 第34-43页 |
| ·施氏鲟不同年龄血清性类固醇激素的变化 | 第34-35页 |
| ·实验材料 | 第34页 |
| ·放射免疫测定方法 | 第34-35页 |
| ·施氏鲟不同年龄性腺组织的发育 | 第35-37页 |
| ·实验材料 | 第35页 |
| ·实验试剂的配置 | 第35-36页 |
| ·光镜材料固定和处理 | 第36页 |
| ·光镜材料的H.E.染色法 | 第36页 |
| ·电镜材料的固定和处理 | 第36-37页 |
| ·口服E_2诱导施氏鲟全雌化实验 | 第37-38页 |
| ·实验材料 | 第37页 |
| ·饲料的配置 | 第37页 |
| ·试验分组及投喂管理 | 第37-38页 |
| ·全雌化后血清中E_2的测定方法 | 第38-39页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·实验试剂的配置 | 第38页 |
| ·口服试验样品的测定 | 第38-39页 |
| ·全雌化后血清中T的测定方法 | 第39页 |
| ·标准曲线的制作 | 第39页 |
| ·样品的测定 | 第39页 |
| ·全雌化后组织中E_2残留的测定方法 | 第39-41页 |
| ·实验材料 | 第39-40页 |
| ·口服试验样品的测定 | 第40-41页 |
| ·全雌化后的雌性率及性腺组织学观察 | 第41页 |
| ·实验材料 | 第41页 |
| ·实验试剂的配置 | 第41页 |
| ·全雌化后雌性率的统计 | 第41页 |
| ·人工养殖施氏鲟雌雄比的统计 | 第41-42页 |
| ·本章小结 | 第42-43页 |
| 3 结果 | 第43-62页 |
| ·不同年龄施氏鲟血清中T和E_2的浓度 | 第43-44页 |
| ·E_2的标准曲线 | 第43页 |
| ·T的标准曲线 | 第43页 |
| ·血清中T、E_2的浓度 | 第43-44页 |
| ·亲鱼血清中T、E_2的浓度 | 第44页 |
| ·全雌化后血清中T、E_2的含量 | 第44-47页 |
| ·E_2的标准曲线 | 第44-45页 |
| ·T的标准曲线 | 第45页 |
| ·全雌后血清中E_2的含量 | 第45-46页 |
| ·全雌后血清中T的含量 | 第46-47页 |
| ·全雌化后组织中E2的残留 | 第47-48页 |
| ·不同年龄施氏鲟性腺的组织学观察 | 第48-52页 |
| ·性腺的组织0期的观察结果 | 第48-49页 |
| ·性腺一期 | 第49页 |
| ·性腺二期 | 第49-50页 |
| ·性腺三期 | 第50-51页 |
| ·性腺四期 | 第51页 |
| ·性腺五期 | 第51-52页 |
| ·性腺六期 | 第52页 |
| ·早期性腺的超微结构 | 第52-59页 |
| ·早期卵巢 | 第52-53页 |
| ·早期精巢 | 第53-59页 |
| ·诱导后施氏鲟雌性率的比较及性腺组织学观察结果 | 第59-61页 |
| ·诱导后施氏鲟雌性率的比较 | 第59-60页 |
| ·性腺组织学观察结果 | 第60-61页 |
| ·本章小结 | 第61-62页 |
| 4 讨论 | 第62-69页 |
| ·不同年龄施氏鲟血清中T和E_2的含量变化 | 第62页 |
| ·全雌化后血清中T与E_2的浓度变化 | 第62-63页 |
| ·全雌化后E_2在鱼体内的残留 | 第63-64页 |
| ·原生殖细胞的起源、迁移途径及早期性腺的构建 | 第64-65页 |
| ·性腺分期、卵巢发育成熟时间与周期 | 第65-66页 |
| ·生殖质的形成及性别决定 | 第66页 |
| ·外源性激素对鱼类性别的诱导 | 第66-69页 |
| 结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-85页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 个人简历 | 第87-88页 |
