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栀子组织和悬浮细胞培养及其多糖的分离纯化和生物学活性的研究

中文摘要第1-9页
英文摘要第9-12页
第一章 文献综述第12-39页
 1.栀子有效成分研究的进展第12-15页
 2.植物多糖的研究进展第15-28页
 3.多糖与生物大分子之间的关系第28-35页
 4.从糖的角度认识生命第35-39页
第二章 栀子的组织培养和细胞悬浮系的建立第39-47页
 1.试材和方法第39-40页
  1.1 试材第39页
  1.2 无菌外植体的获得第39页
  1.3 培养条件第39页
  1.4 添加物的提取第39-40页
  1.5 细胞悬浮系的建立第40页
  1.6 试管苗的快速繁殖第40页
  1.7 统计项目第40页
 2.结果与分析第40-46页
  2.1 不同类型的基本培养基对出愈的影响第40页
  2.2 不同外植体对出愈的影响第40-42页
  2.3 基本培养基中大量元素的改变对出愈的影响第42页
  2.4 添加物对出愈和愈伤组织生长的影响第42-43页
  2.5 激素的组合设计对愈伤组织生长的影响第43-44页
  2.6 细胞悬浮系的建立第44-45页
  2.7 试管苗的快速繁殖第45-46页
 3.讨论第46-47页
第三章 栀子细胞培养中多糖的生化调控第47-65页
 1.材料与方法第47-49页
  1.1 试材第47页
  1.2 培养条件第47页
  1.3 激素的二因素二次回归设计第47-48页
  1.4 红曲霉诱导物的制备第48页
  1.5 细胞中多糖含量的测定第48页
  1.6 培养基中可溶性糖含量的测定第48-49页
 2.结果和分析第49-64页
  2.1 栀子悬浮细胞生长和多糖形成的时间进程第49-51页
  2.2 生物学因子对栀子悬浮细胞的生长和多糖含量的影响第51-54页
  2.3 化学因子对栀子悬浮细胞的生长和多糖含量的影响第54-60页
  2.4 物理学因子对细胞生长和多糖合成的影响第60-64页
 3.讨论第64-65页
第四章 栀子多糖的提取和纯化第65-81页
 1.材料和方法第65-70页
  1.1 材料第65页
  1.2 多糖提取的工艺流程第65页
  1.3 多糖提取条件的设计第65-66页
  1.4 多糖的醇析第66-67页
  1.5 多糖的纯化第67-68页
  1.6 纯度鉴定第68-69页
  1.7 多糖分子量的测定第69页
  1.8 多糖含量的测定:苯酚-硫酸法第69页
  1.9 蛋白质含量的测定:考马斯亮蓝(G-250)法第69-70页
  1.10 不同器官栀子多糖含量的比较第70页
 2.结果与分析第70-80页
  2.1 桅子多糖提取条件的确立第70-71页
  2.2 醇析对多糖得率的影响第71-72页
  2.3 脱色素第72页
  2.4 Savage法除蛋白质第72-74页
  2.5 DEAE-52纤维素柱层析第74-75页
  2.6 多糖纯度的鉴定第75-79页
  2.7 多糖分子量的测定第79页
  2.8 栀子多糖的部分理化性质第79页
  2.9 不同器官中栀子多糖的含量第79-80页
 3.讨论第80-81页
第五章 栀子多糖的生物学活性研究第81-98页
 1.材料和方法第82-87页
  1.1 多糖抗肿瘤活性的初筛——土豆碟抗凸瘤实验法第82-83页
  1.2 体外抑瘤实验第83-84页
  1.3 活体抑瘤实验第84-85页
  1.4 体外抗氧化实验第85-86页
  1.5 体内抗氧化实验第86-87页
 2.结果与分析第87-96页
  2.1 土豆碟法测定栀子多糖对根癌农杆菌致癌的抑制情况第87-89页
  2.2 栀子多糖体外抑制人红白血病细胞K562的效果第89页
  2.3 栀子多糖抑制小鼠肝癌实体瘤的效果第89页
  2.4 栀子多糖体外清除超氧阴离子自由基第89-93页
  2.5 栀子多糖体外清除羟自由基第93-95页
  2.6 栀子多糖对荷瘤小鼠SOD活性和MDA含量的影响第95-96页
 3.讨论第96-98页
结论第98-99页
创新点第99-100页
参考文献第100-111页
博士生在读期间论文发表情况第111-112页
致谢第112-113页

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