摘要 | 第3-4页 |
abstract | 第4-5页 |
第1章 引言 | 第9-12页 |
1.1 新生儿缺氧缺血性脑病 | 第9页 |
1.2 NHIE发病机制 | 第9-10页 |
1.3 海马 | 第10-11页 |
1.4 催产素 | 第11-12页 |
第2章 材料与方法 | 第12-21页 |
2.1 实验材料 | 第12-14页 |
2.1.1 实验动物 | 第12页 |
2.1.2 实验仪器 | 第12-13页 |
2.1.3 主要实验试剂 | 第13-14页 |
2.2 实验溶液配制 | 第14-16页 |
2.2.1 蔗糖解剖液的配制 | 第14页 |
2.2.2 人工脑脊液 | 第14-15页 |
2.2.3 氧-糖剥夺液 | 第15页 |
2.2.4 钾电极内液 | 第15页 |
2.2.5 铯电极内液 | 第15-16页 |
2.2.6 常用试剂配制及用法 | 第16页 |
2.3 脑片制备 | 第16-17页 |
2.3.1 实验分组 | 第17页 |
2.4 体外缺氧缺血模型制备 | 第17页 |
2.5 TOPRO-3染色 | 第17-18页 |
2.6 电生理 | 第18-20页 |
2.6.1 电极制备 | 第18页 |
2.6.2 记录前准备 | 第18页 |
2.6.3 全细胞膜片钳记录 | 第18-19页 |
2.6.4 缺氧去极化时间记录 | 第19页 |
2.6.5 IPSC记录 | 第19页 |
2.6.6 EPSC记录 | 第19-20页 |
2.7 数据分析及统计学 | 第20-21页 |
第3章 结果 | 第21-30页 |
3.1 催产素减少缺氧缺血性损伤导致的新生大鼠海马CA1区椎体层神经元的死亡 | 第21-22页 |
3.2 催产素可延长新生大鼠海马CA1区椎体神经元出现缺氧去极化的时间 | 第22-25页 |
3.3 催产素增强新生大鼠海马CA1区椎体神经元的SIPSCS,而不影响SEPSCS | 第25-26页 |
3.4 催产素对新生大鼠海马椎体神经元的SIPSC的影响呈剂量依赖关系 | 第26-28页 |
3.5 催产素增强SIPSCS的作用来自于突触前神经元的活动 | 第28页 |
3.6 催产素通过结合催产素受体影响抑制性突触传递 | 第28-30页 |
第4章 讨论 | 第30-34页 |
4.1 催产素对新生大鼠海马CA1区椎体神经元缺氧缺血性损伤具有保护作用 | 第30-31页 |
4.2 催产素增强新生大鼠海马CA1区椎体神经元的抑制性神经传递 | 第31-32页 |
4.3 催产素可能的神经保护作用机制 | 第32-34页 |
第5章 结论与展望 | 第34-35页 |
5.1 结论 | 第34页 |
5.2 展望 | 第34-35页 |
致谢 | 第35-36页 |
参考文献 | 第36-41页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第41-42页 |
综述 | 第42-48页 |
参考文献 | 第46-48页 |