英文缩略词表 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-11页 |
Abstract | 第11-14页 |
前言 | 第15-19页 |
神经病理性疼痛与炎症反应 | 第15-16页 |
JAK/STAT通路的活化与神经病理性疼痛的关系 | 第16-17页 |
JAK/STAT通路抑制剂对神经病理性疼痛的影响 | 第17页 |
miR-203与神经病理性疼痛的关系 | 第17-19页 |
技术路线 | 第19-20页 |
材料 | 第20-24页 |
方法 | 第24-42页 |
1. 动物试验 | 第24-27页 |
1.1 模型建立 | 第24页 |
1.2 行为学观察 | 第24-25页 |
1.3 鞘内置管及给药 | 第25-26页 |
1.4 标本取材 | 第26-27页 |
2. RT-PCR大鼠脊髓背角目的基因的研究 | 第27-30页 |
2.1 组织总RNA提取 | 第27页 |
2.2 紫外分光光度仪测定RNA浓度与质量鉴定 | 第27-28页 |
2.3 琼脂糖电泳鉴定RNA完整性 | 第28页 |
2.4 荧光实时定量PCR(染料法) | 第28-30页 |
3. Western-blot大鼠脊髓背角目的蛋白的研究 | 第30-32页 |
3.1 蛋白质样品制备 | 第30页 |
3.2 BCA法进行蛋白质浓度测定 | 第30-31页 |
3.3 SDS-PAGE | 第31页 |
3.4 转膜 | 第31-32页 |
3.5 免疫印记 | 第32页 |
3.6 化学发光/显影、定影 | 第32页 |
4. 免疫荧光 | 第32-33页 |
4.1 取材及切片 | 第32页 |
4.2 免疫荧光 | 第32-33页 |
5. miRNA过表达慢病毒载体制备 | 第33-41页 |
5.1 目的基因扩增与慢病毒质粒的线性化 | 第33-35页 |
5.2 重组质粒构建 | 第35页 |
5.3 转化 | 第35-36页 |
5.4 阳性克隆的PCR鉴定 | 第36-37页 |
5.5 阳性克隆测序结果及结果分析 | 第37页 |
5.6 Lentivirus病毒包装 | 第37-38页 |
5.7 病毒的收获及浓缩 | 第38页 |
5.8 Lentivirus滴度测定 | 第38-39页 |
5.9 样品说明 | 第39-40页 |
5.10 滴度计算 | 第40-41页 |
6. 统计学方法 | 第41-42页 |
结果 | 第42-64页 |
1. 行为学变化 | 第42-49页 |
1.1 双侧CCI模型的建立和行为学变化的观察 | 第42-44页 |
1.2 鞘内注射WP1066后动物行为学方面改善 | 第44-47页 |
1.3 鞘内注射miR-203过表达慢病毒载体后行为学变化 | 第47-49页 |
2. 荧光实时定量Real-time PCR结果 | 第49-56页 |
2.1 总RNA质量的鉴定 | 第49-50页 |
2.2 反转录PCR结果 | 第50页 |
2.3 Real-Time PCR检测基因表达情况 | 第50-52页 |
2.4 目的基因的变化 | 第52-56页 |
3. Western-Blot免疫印记法检测结果 | 第56-62页 |
3.1 BSA标准曲线 | 第56-57页 |
3.2 目的蛋白表达情况 | 第57-59页 |
3.3 预实验Western结果 | 第59-60页 |
3.4 WP1066干扰对目的蛋白的影响 | 第60-62页 |
4. 免疫组化及免疫荧光结果 | 第62-64页 |
4.1 JAK2/STAT3通路在脊髓背角定位诊断 | 第62-63页 |
4.2 Rno-miR-203病毒载体检测 | 第63-64页 |
讨论 | 第64-69页 |
神经病理性疼痛模型的选择 | 第64页 |
大鼠bCCI神经病理性疼痛模型JAK/STAT通路活化 | 第64-66页 |
WP1066抑制JAK2/STAT3通路,明显改善动物行为学 | 第66-67页 |
miR-203对神经病理性疼痛潜在疗效 | 第67-68页 |
研究现状与展望 | 第68-69页 |
结论 | 第69-70页 |
参考文献 | 第70-73页 |
综述 | 第73-82页 |
摘要 | 第73页 |
Abstract | 第73-74页 |
JAK/STAT通路 | 第74-76页 |
SOCS调节JAK/STAT信号通路 | 第76-77页 |
JAK/STAT通路、SOCS与神经病理性疼痛的关系 | 第77-80页 |
参考文献 | 第80-82页 |
致谢 | 第82-84页 |
个人简历 | 第84页 |