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JAK2/STAT3信号通路对神经病理性疼痛机制及干预的影响

英文缩略词表第6-8页
中文摘要第8-11页
Abstract第11-14页
前言第15-19页
    神经病理性疼痛与炎症反应第15-16页
    JAK/STAT通路的活化与神经病理性疼痛的关系第16-17页
    JAK/STAT通路抑制剂对神经病理性疼痛的影响第17页
    miR-203与神经病理性疼痛的关系第17-19页
技术路线第19-20页
材料第20-24页
方法第24-42页
    1. 动物试验第24-27页
        1.1 模型建立第24页
        1.2 行为学观察第24-25页
        1.3 鞘内置管及给药第25-26页
        1.4 标本取材第26-27页
    2. RT-PCR大鼠脊髓背角目的基因的研究第27-30页
        2.1 组织总RNA提取第27页
        2.2 紫外分光光度仪测定RNA浓度与质量鉴定第27-28页
        2.3 琼脂糖电泳鉴定RNA完整性第28页
        2.4 荧光实时定量PCR(染料法)第28-30页
    3. Western-blot大鼠脊髓背角目的蛋白的研究第30-32页
        3.1 蛋白质样品制备第30页
        3.2 BCA法进行蛋白质浓度测定第30-31页
        3.3 SDS-PAGE第31页
        3.4 转膜第31-32页
        3.5 免疫印记第32页
        3.6 化学发光/显影、定影第32页
    4. 免疫荧光第32-33页
        4.1 取材及切片第32页
        4.2 免疫荧光第32-33页
    5. miRNA过表达慢病毒载体制备第33-41页
        5.1 目的基因扩增与慢病毒质粒的线性化第33-35页
        5.2 重组质粒构建第35页
        5.3 转化第35-36页
        5.4 阳性克隆的PCR鉴定第36-37页
        5.5 阳性克隆测序结果及结果分析第37页
        5.6 Lentivirus病毒包装第37-38页
        5.7 病毒的收获及浓缩第38页
        5.8 Lentivirus滴度测定第38-39页
        5.9 样品说明第39-40页
        5.10 滴度计算第40-41页
    6. 统计学方法第41-42页
结果第42-64页
    1. 行为学变化第42-49页
        1.1 双侧CCI模型的建立和行为学变化的观察第42-44页
        1.2 鞘内注射WP1066后动物行为学方面改善第44-47页
        1.3 鞘内注射miR-203过表达慢病毒载体后行为学变化第47-49页
    2. 荧光实时定量Real-time PCR结果第49-56页
        2.1 总RNA质量的鉴定第49-50页
        2.2 反转录PCR结果第50页
        2.3 Real-Time PCR检测基因表达情况第50-52页
        2.4 目的基因的变化第52-56页
    3. Western-Blot免疫印记法检测结果第56-62页
        3.1 BSA标准曲线第56-57页
        3.2 目的蛋白表达情况第57-59页
        3.3 预实验Western结果第59-60页
        3.4 WP1066干扰对目的蛋白的影响第60-62页
    4. 免疫组化及免疫荧光结果第62-64页
        4.1 JAK2/STAT3通路在脊髓背角定位诊断第62-63页
        4.2 Rno-miR-203病毒载体检测第63-64页
讨论第64-69页
    神经病理性疼痛模型的选择第64页
    大鼠bCCI神经病理性疼痛模型JAK/STAT通路活化第64-66页
    WP1066抑制JAK2/STAT3通路,明显改善动物行为学第66-67页
    miR-203对神经病理性疼痛潜在疗效第67-68页
    研究现状与展望第68-69页
结论第69-70页
参考文献第70-73页
综述第73-82页
    摘要第73页
    Abstract第73-74页
    JAK/STAT通路第74-76页
    SOCS调节JAK/STAT信号通路第76-77页
    JAK/STAT通路、SOCS与神经病理性疼痛的关系第77-80页
    参考文献第80-82页
致谢第82-84页
个人简历第84页

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