| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 缩略语表 | 第19-21页 |
| 第一章 文献综述 | 第21-45页 |
| 1.1 绪论 | 第21页 |
| 1.2 苯乳酸的合成及其分离 | 第21-32页 |
| 1.2.1 苯乳酸的抑菌机理 | 第22-24页 |
| 1.2.2 苯乳酸的化学合成法 | 第24-25页 |
| 1.2.3 苯乳酸的生物合成 | 第25-30页 |
| 1.2.4 苯乳酸的分离纯化 | 第30-32页 |
| 1.3 晶胶介质 | 第32-43页 |
| 1.3.1 晶胶介质的制备 | 第33-34页 |
| 1.3.2 晶胶介质的选择 | 第34-35页 |
| 1.3.3 晶胶形态 | 第35-37页 |
| 1.3.4 晶胶介质的修饰 | 第37-39页 |
| 1.3.5 晶胶介质的性能研究 | 第39-40页 |
| 1.3.6 晶胶介质的应用 | 第40-43页 |
| 1.4 本文研究思路和内容 | 第43-45页 |
| 第二章 高产苯乳酸菌株的筛选 | 第45-67页 |
| 2.1 引言 | 第45-46页 |
| 2.2 材料和方法 | 第46-50页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第46页 |
| 2.2.2 样品的采集 | 第46页 |
| 2.2.3 培养基和培养条件 | 第46-47页 |
| 2.2.4 菌株的初筛及复筛 | 第47-48页 |
| 2.2.5 菌株形态观察 | 第48页 |
| 2.2.6 菌种生理生化特性及16S rDNA分子鉴定 | 第48-49页 |
| 2.2.7 高产菌种生长特性的测定 | 第49页 |
| 2.2.8 不同底物对微生物代谢苯乳酸的影响 | 第49-50页 |
| 2.2.9 不同底物对全细胞催化苯乳酸的影响 | 第50页 |
| 2.3 分析方法 | 第50-52页 |
| 2.3.1 HPLC分析底物与代谢产物 | 第50-51页 |
| 2.3.2 葡萄糖的测定 | 第51页 |
| 2.3.3 胞外多糖的提取和测定 | 第51-52页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第52-64页 |
| 2.4.1 各种有机酸的标准曲线 | 第52-53页 |
| 2.4.2 苯乳酸高效转化合成菌种的筛选 | 第53-55页 |
| 2.4.3 高产菌株的鉴定 | 第55-58页 |
| 2.4.4 布氏乳杆菌GBS3的生长特性研究 | 第58-61页 |
| 2.4.5 添加不同底物对微生物代谢苯乳酸的影响 | 第61-63页 |
| 2.4.6 底物对全细胞催化合成苯乳酸的影响 | 第63-64页 |
| 2.5 本章小结 | 第64-67页 |
| 第三章 叠影取样均匀设计法优化布氏乳杆菌生物转化合成苯乳酸 | 第67-83页 |
| 3.1 引言 | 第67-68页 |
| 3.2 材料和方法 | 第68-72页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第68-69页 |
| 3.2.2 培养基和培养条件 | 第69页 |
| 3.2.3 发酵方式对全细胞催化剂的影响 | 第69页 |
| 3.2.4 叠影取样均匀设计法优化布氏乳杆菌生物转化苯乳酸条件 | 第69-72页 |
| 3.3 分析方法 | 第72页 |
| 3.3.1 HPLC分析苯丙酮酸、苯丙氨酸和苯乳酸 | 第72页 |
| 3.3.2 HPLC手性分析苯乳酸 | 第72页 |
| 3.3.3 葡萄糖的测定 | 第72页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第72-81页 |
| 3.4.1 不同发酵方式对全细胞催化剂的影响 | 第72-76页 |
| 3.4.2 叠影取样均匀设计法优化苯乳酸转化合成条件 | 第76-81页 |
| 3.5 本章小结 | 第81-83页 |
| 第四章 晶胶微球的制备及固定化布氏乳杆菌生物转化合成苯乳酸 | 第83-109页 |
| 4.1 引言 | 第83-84页 |
| 4.2 材料和方法 | 第84-90页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第84-85页 |
| 4.2.2 培养基和培养条件 | 第85页 |
| 4.2.3 pHEMA晶胶微球的制备 | 第85-86页 |
| 4.2.4 晶胶微球的表征 | 第86-87页 |
| 4.2.5 pHEMA晶胶微球固定化细胞的制备 | 第87页 |
| 4.2.6 海藻酸钠晶胶微球固定化细胞的制备 | 第87-88页 |
| 4.2.7 固定化细胞的批次利用 | 第88页 |
| 4.2.8 乳酸菌的高密度培养研究 | 第88-90页 |
| 4.3 分析方法 | 第90页 |
| 4.3.1 HPLC分析苯乳酸 | 第90页 |
| 4.3.2 葡萄糖的测定 | 第90页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第90-106页 |
| 4.4.1 晶胶微球的表征 | 第90-95页 |
| 4.4.2 固定化细胞载体微球的多批次转化 | 第95-100页 |
| 4.4.3 pHEMA载体微球固定化乳酸菌高密度培养研究 | 第100-106页 |
| 4.5 本章小结 | 第106-109页 |
| 第五章 双功能基团晶胶介质及其在苯乳酸分离中的应用 | 第109-137页 |
| 5.1 引言 | 第109-110页 |
| 5.2 材料和方法 | 第110-116页 |
| 5.2.1 试剂与仪器 | 第110-111页 |
| 5.2.2 双功能官能团晶胶介质的制备 | 第111页 |
| 5.2.3 离子交换晶胶介质的基础性能测试 | 第111-113页 |
| 5.2.4 晶胶介质的吸附性能测定 | 第113-114页 |
| 5.2.5 静态吸附实验 | 第114-115页 |
| 5.2.6 苯乳酸层析分离 | 第115-116页 |
| 5.3 分析方法 | 第116-117页 |
| 5.3.1 蛋白质含量测定 | 第116页 |
| 5.3.2 HPLC分析苯乳酸、苯丙酮酸 | 第116-117页 |
| 5.3.3 葡萄糖的测定 | 第117页 |
| 5.4 实验结果与讨论 | 第117-134页 |
| 5.4.1 晶胶柱的基础性能 | 第117-120页 |
| 5.4.2 晶胶介质对蛋白质的吸附与解吸性能 | 第120-121页 |
| 5.4.3 苯乳酸在pHEMA基双功能基团晶胶介质中吸附平衡 | 第121-124页 |
| 5.4.4 从澄清料液中分离苯乳酸 | 第124-130页 |
| 5.4.5 粗料液中苯乳酸的分离 | 第130-134页 |
| 5.5 本章小结 | 第134-137页 |
| 第六章 晶胶柱内苯乳酸传质过程的数学模型 | 第137-151页 |
| 6.1 引言 | 第137-138页 |
| 6.2 材料和方法 | 第138页 |
| 6.2.1 试剂与仪器 | 第138页 |
| 6.2.2 配制苯乳酸溶液 | 第138页 |
| 6.2.3 苯乳酸溶液的穿透 | 第138页 |
| 6.3 模型的建立 | 第138-143页 |
| 6.3.1 毛细管结构和孔隙率 | 第139-140页 |
| 6.3.2 毛细管内的流体流动特性和晶胶渗透性能 | 第140-141页 |
| 6.3.3 质量守恒方程 | 第141-142页 |
| 6.3.4 毛细管的弯曲度 | 第142-143页 |
| 6.4 数值计算方法 | 第143-144页 |
| 6.5 结果与讨论 | 第144-148页 |
| 6.5.1 毛细管总数和弯曲度 | 第144-145页 |
| 6.5.2 毛细管直径分布及骨架厚度 | 第145-146页 |
| 6.5.3 渗透率和轴向扩散 | 第146-147页 |
| 6.5.4 非吸附的穿透过程 | 第147-148页 |
| 6.6 本章小结 | 第148-151页 |
| 第七章 结论和展望 | 第151-155页 |
| 7.1 结论 | 第151-152页 |
| 7.2 展望 | 第152-155页 |
| 参考文献 | 第155-177页 |
| 攻读博士学位期间的研究成果 | 第177-179页 |
| 作者简介 | 第179页 |
