| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-15页 |
| 研究现状、成果 | 第11-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-15页 |
| 一、原代培养HTF | 第15-27页 |
| 1.1 对象和方法 | 第15-22页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第15页 |
| 1.1.2 主要仪器、材料及试剂 | 第15-17页 |
| 1.1.3 实验方法 | 第17-22页 |
| 1.1.3.1 原代培养Tenon's囊成纤维细胞 | 第17-19页 |
| 1.1.3.2 鉴定所养细胞为成纤维细胞 | 第19-22页 |
| 1.1.3.2.1 基因水平鉴定(RT-PCR) | 第19-22页 |
| 1.1.3.2.2 蛋白水平检测(免疫荧光) | 第22页 |
| 1.2 结果 | 第22-25页 |
| 1.2.1 Tenon's-囊成纤维细胞形态 | 第22-23页 |
| 1.2.2. 鉴定结果 | 第23-25页 |
| 1.2.2.1 RT-PCR鉴定成纤维细胞 | 第23-24页 |
| 1.2.2.2 免疫荧光鉴定成纤维细胞 | 第24-25页 |
| 1.3 讨论 | 第25-26页 |
| 1.3.1 HTF的原代培养 | 第26页 |
| 1.3.2 HTF的鉴定 | 第26页 |
| 1.4 小结 | 第26-27页 |
| 二、TGFβ3刺激HTF后细胞增殖的变化 | 第27-48页 |
| 2.1 对象和方法 | 第27-35页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第27页 |
| 2.1.2 主要仪器、材料及试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第28-35页 |
| 2.1.3.1 不同浓度TGFβ3刺激HTF细胞 | 第28页 |
| 2.1.3.2 TGFβ2刺激HTF细胞(阳性对照) | 第28-29页 |
| 2.1.3.3 不同组HTF的细胞增殖实验 | 第29页 |
| 2.1.3.4 不同刺激作用于HTF,细胞中ECM成分表达的变化 | 第29-35页 |
| 2.1.3.4.1 RT-PCR及Real-time PCR检测不同刺激下HTF中FN、COL Ⅰ、COLⅣα1-α6、GAPDH基因表达的变化 | 第29-35页 |
| 2.1.3.4.2 免疫组化检测不同刺激下HTF中Fibronectin、COL Ⅰ、COL Ⅳα1-α6、GAPDH基因表达的变化 | 第35页 |
| 2.2 结果 | 第35-44页 |
| 2.2.1 不同浓度、不同时间TGFβ2刺激HTF细胞 | 第36页 |
| 2.2.2 不同浓度TGFβ3刺激HTF | 第36-38页 |
| 2.2.3 不同刺激组刺激HTF后,细胞增殖情况 | 第38-39页 |
| 2.2.4 不同刺激下ECM成分的变化 | 第39-44页 |
| 2.2.4.1 No treated、TGFβ2、TGFβ3刺激细胞,RT-PCR、Real-time PCR检测Fibronectin、COL Ⅰ、COLⅣα1-α6基因表达的变化 | 第39-42页 |
| 2.2.4.2 No treated、TGFβ2、TGFβ3刺激细胞,免疫组化检测Fibronectin、COL Ⅰ、COLⅣ蛋白表达的变化 | 第42-44页 |
| 2.3 讨论 | 第44-47页 |
| 2.3.1 TGFβ3刺激HTF | 第44-45页 |
| 2.3.2 TGFβ2刺激HTF | 第45页 |
| 2.3.3 不同刺激作用于HTF | 第45-46页 |
| 2.3.4 不同刺激作用于HTF,细胞中ECM表达的变化 | 第46-47页 |
| 2.4 小结 | 第47-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 本论文的不足和进一步研究方向 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-54页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第54-55页 |
| 综述 眼部瘢痕形成过程中TGFβ与microRNA的相互作用 | 第55-63页 |
| 综述参考文献 | 第60-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
