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叶酸—壳聚糖修饰纳米硒的制备及其评价

摘要第3-5页
abstract第5-7页
符号说明第12-13页
前言第13-14页
第一章 绪论第14-25页
    1.1 硒的性质第14-15页
        1.1.1 硒的种类第14页
        1.1.2 硒的生物活性第14页
        1.1.3 硒的毒性第14-15页
    1.2 纳米硒的毒性及影响因素第15-16页
        1.2.1 纳米硒的毒性第15页
        1.2.2 影响纳米硒毒性的因素第15-16页
            1.2.2.1 剂量的影响第15页
            1.2.2.2 形态的影响第15页
            1.2.2.3 粒径的影响第15-16页
            1.2.2.4 电荷的影响第16页
    1.3 纳米硒的制备方法第16-17页
        1.3.1 化学法制备纳米硒第16-17页
        1.3.2 物理法制备纳米硒第17页
        1.3.3 生物法制备纳米硒第17页
    1.4 纳米硒的应用第17-19页
        1.4.1 抗癌活性第17-18页
        1.4.2 抑菌活性第18页
        1.4.3 抗炎及抗氧化第18-19页
        1.4.4 其他应用第19页
    1.5 纳米硒的修饰第19-20页
        1.5.1 多糖的修饰第19页
        1.5.2 电荷的修饰第19-20页
        1.5.3 靶向性配体的修饰第20页
    1.6 壳聚糖及其衍生物第20-21页
        1.6.1 壳聚糖及其衍生物的性质第20-21页
        1.6.2 壳聚糖及其衍生物在药物传递系统中的应用第21页
        1.6.3 壳聚糖及其衍生物在纳米硒制备中的应用第21页
    1.7 叶酸在靶向给药系统中的应用第21-23页
        1.7.1 叶酸与叶酸受体第21-22页
        1.7.2 叶酸在靶向给药系统中的应用第22-23页
    1.8 联合纳米硒给药的药物传递系统第23页
    1.9 本课题的研究目的及意义第23-25页
第二章 壳聚糖的叶酸修饰及其表征第25-36页
    2.1 概述第25页
    2.2 实验部分第25-29页
        2.2.1 实验材料与仪器第25-26页
        2.2.2 壳聚糖的叶酸修饰及纯化第26-27页
            2.2.2.1 壳聚糖的叶酸修饰第26页
            2.2.2.2 叶酸-壳聚糖的纯化第26-27页
        2.2.3 叶酸-壳聚糖的表征第27-28页
            2.2.3.1 薄层色谱法第27页
            2.2.3.2 红外光谱法第27页
            2.2.3.3 核磁共振氢谱法第27-28页
        2.2.4 叶酸-壳聚糖结合率的评价第28页
            2.2.4.1 叶酸标准曲线的建立第28页
            2.2.4.2 叶酸-壳聚糖结合率的计算方法第28页
        2.2.5 叶酸修饰壳聚糖的条件优化第28-29页
            2.2.5.1 单因素考察第28页
            2.2.5.2 正交实验第28-29页
            2.2.5.3 最优条件的验证第29页
    2.3 结果与讨论第29-35页
        2.3.1 壳聚糖的叶酸修饰第29页
        2.3.2 叶酸-壳聚糖的表征第29-32页
            2.3.2.1 薄层色谱法第29-30页
            2.3.2.2 红外光谱法第30-31页
            2.3.2.3 核磁共振氢谱法第31-32页
        2.3.3 叶酸标准曲线的建立第32页
        2.3.4 叶酸修饰壳聚糖的条件优化第32-35页
            2.3.4.1 单因素考察第32-33页
            2.3.4.2 正交实验第33-34页
            2.3.4.3 最优反应条件的验证第34-35页
    2.4 本章小结第35-36页
第三章 叶酸-壳聚糖修饰纳米硒的制备及其表征第36-46页
    3.1 概述第36页
    3.2 实验部分第36-38页
        3.2.1 实验材料与仪器第36-37页
        3.2.2 纳米硒的制备方法第37页
            3.2.2.1 储备液的配制第37页
            3.2.2.2 纳米硒的制备第37页
        3.2.3 叶酸-壳聚糖修饰纳米硒的制备第37-38页
        3.2.4 纳米硒及叶酸-壳聚糖修饰纳米硒的表征第38页
            3.2.4.1 粒径及粒径分布第38页
            3.2.4.2 Zeta电位第38页
            3.2.4.3 形态特征第38页
        3.2.5 纳米硒及修饰纳米硒的物理稳定性第38页
            3.2.5.1 纳米硒及修饰纳米硒的聚集、沉降特点第38页
            3.2.5.2 纳米硒及修饰纳米硒的粒径变化第38页
    3.3 结果与讨论第38-45页
        3.3.1 纳米硒的制备第38-39页
        3.3.2 叶酸-壳聚糖修饰纳米硒的制备第39-40页
        3.3.3 纳米硒及叶酸-壳聚糖修饰纳米硒的表征第40-42页
            3.3.3.1 平均粒径及其分布第40页
            3.3.3.2 Zeta电位第40-42页
        3.3.4 纳米硒及修饰纳米硒的物理稳定性第42-45页
            3.3.4.1 纳米硒及修饰纳米硒的聚集、沉降特点第42-44页
            3.3.4.2 纳米硒及修饰纳米硒的粒径变化第44-45页
    3.4 本章小结第45-46页
第四章 叶酸-壳聚糖修饰纳米硒的靶向性及抗癌效果评价第46-53页
    4.1 概述第46页
    4.2 实验部分第46-49页
        4.2.1 实验材料与设备第46-47页
        4.2.2 细胞的复苏第47页
        4.2.3 细胞的传代第47页
        4.2.4 样品的配制第47-48页
            4.2.4.1 储备液的配制第47-48页
            4.2.4.2 样品的制备第48页
        4.2.5 体外细胞毒性实验第48-49页
            4.2.5.1 实验设计第48页
            4.2.5.2 实验方法第48-49页
        4.2.6 统计学处理第49页
    4.3 结果与讨论第49-51页
        4.3.1 MTT法测定的细胞存活率第49-50页
        4.3.2 细胞存活率的统计学分析第50-51页
    4.4 本章小结第51-53页
第五章 叶酸-壳聚糖修饰纳米硒与脂质体复合体系的构建第53-70页
    5.1 概述第53页
    5.2 实验部分第53-58页
        5.2.1 实验材料与仪器第53-54页
        5.2.2 负载荧光素脂质体的制备第54-55页
        5.2.3 荧光素分析方法的建立第55页
            5.2.3.1 荧光素激发波长和发射波长的确定第55页
            5.2.3.2 荧光素标准曲线的建立第55页
        5.2.4 脂质体与游离荧光素的分离第55-56页
            5.2.4.1 透析时间的确定第55页
            5.2.4.2 分离方法的验证第55-56页
        5.2.5 脂质体包封率的评价第56页
        5.2.6 FA-CS-SeNPs-Lips复合体系的构建第56页
            5.2.6.1 储备液的配制第56页
            5.2.6.2 FA-CS-SeNPs-Lips复合体系的构建第56页
        5.2.7 脂质体及FA-CS-SeNPs-Lips复合体系的表征第56-57页
            5.2.7.1 形态特征第56-57页
            5.2.7.2 粒径分布及Zeta电位第57页
        5.2.8 荧光素的体外释放研究第57页
        5.2.9 荧光素的细胞摄取实验第57-58页
            5.2.9.1 实验设计第57页
            5.2.9.2 细胞的传代与复苏第57页
            5.2.9.3 细胞的接种与加样第57-58页
            5.2.9.4 荧光显微镜观察及荧光素摄取量的比较第58页
        5.2.10 统计学分析第58页
    5.3 结果与讨论第58-69页
        5.3.1 荧光素分析方法的建立第58-60页
            5.3.1.1 荧光素激发光波长及发射光波长的确定第58-59页
            5.3.1.2 荧光素标准曲线的建立第59-60页
        5.3.2 脂质体与未包封荧光素的分离第60-61页
            5.3.2.1 透析时间的确定第60页
            5.3.2.2 分离方法的验证第60-61页
        5.3.3 脂质体的包封率第61页
        5.3.4 脂质体及FA-CS-SeNPs-Lips复合体系的表征第61-63页
            5.3.4.1 形态特征第61-62页
            5.3.4.2 脂质体的平均粒径及粒径分布第62页
            5.3.4.3 Zeta电位第62-63页
        5.3.5 荧光素的体外释放研究第63-64页
        5.3.6 荧光素的细胞摄取实验第64-69页
            5.3.6.1 荧光显微镜第64-66页
            5.3.6.2 荧光强度的定量分析第66-67页
            5.3.6.3 细胞荧光强度的统计学分析第67-69页
    5.4 本章小结第69-70页
结论第70-72页
参考文献第72-79页
致谢第79-80页
攻读硕士学位期间发表的学术论文目录第80-81页

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