缩略语表 | 第1-9页 |
中文摘要 | 第9-12页 |
ABSTRACT | 第12-15页 |
前言 | 第15-16页 |
文献回顾 | 第16-37页 |
一、噪声性听力损伤的发生机制 | 第17-18页 |
二、耳蜗微循环调控的研究现状 | 第18-20页 |
三、H_2S | 第20-22页 |
1 H_2S 的理化性质 | 第20-21页 |
2 内源性 H_2S 在机体内的分布及其在心血管系统的生理作用 | 第21-22页 |
四 H_2S 参与耳蜗血管调节的初步预实验结果 | 第22-25页 |
五 内耳血供特点 | 第25-32页 |
1 耳蜗血管解剖特点 | 第25-27页 |
2 耳蜗血流量和分布 | 第27-28页 |
3 耳蜗血流或淋巴间隙检测方法 | 第28-30页 |
4 耳蜗血流紊乱导致的感音神经性耳聋 | 第30-32页 |
六 微渗透压泵 | 第32-35页 |
七 微血管张力测定 | 第35-37页 |
实验一 建立耳蜗局部H_2S/CSE 干预性动物模型 | 第37-43页 |
1 材料 | 第37-38页 |
·动物 | 第37页 |
·试剂与仪器 | 第37-38页 |
2 方法 | 第38-40页 |
·微量渗透泵植入手术 | 第38-39页 |
·相关手术器械及微量渗透泵预处理 | 第39页 |
·ABR 检测 | 第39页 |
·统计学分析 | 第39-40页 |
3 结果 | 第40页 |
·手术损伤对听力影响的组间比较 | 第40页 |
·造模结果 | 第40页 |
4 讨论 | 第40-43页 |
·困难和遇到的问题 | 第40-41页 |
·该造模方法的特点 | 第41-43页 |
实验二 H_2S 对噪声性耳蜗损伤的保护作用 | 第43-55页 |
1 材料 | 第43-44页 |
·动物 | 第43页 |
·试剂与仪器 | 第43-44页 |
·噪声刺激器 | 第44页 |
2 方法 | 第44-46页 |
·动物分组 | 第44-45页 |
·ABR 检测 | 第45页 |
·耳蜗铺片及毛细胞计数 | 第45页 |
·扫描电镜观察 | 第45-46页 |
·统计学分析 | 第46页 |
3 结果 | 第46-53页 |
·预防干预组 | 第46-53页 |
·治疗干预结果 | 第53页 |
4 讨论 | 第53-55页 |
实验三 耳蜗血流监测 | 第55-63页 |
1 材料 | 第55-56页 |
·动物 | 第55页 |
·试剂与仪器 | 第55-56页 |
2 方法 | 第56-58页 |
·检测流程 | 第56-57页 |
·激光多普勒血流仪操作 | 第57页 |
·激光散斑血流成像系统操作 | 第57页 |
·数据统计 | 第57-58页 |
3 结果 | 第58-60页 |
·激光多普勒血流仪检测结果 | 第58-60页 |
·激光散斑血流成像系统检测结果 | 第60页 |
4 讨论 | 第60-63页 |
·两种仪器应用比较 | 第60-62页 |
·噪声刺激后耳蜗血流改变 | 第62页 |
·外源性H_2S 可缓解噪声刺激后的耳蜗血流减少 | 第62-63页 |
实验四 H_2S 的微血管的舒张作用研究 | 第63-72页 |
1 材料 | 第63-64页 |
·动物 | 第63页 |
·试剂与仪器 | 第63-64页 |
2 方法 | 第64-66页 |
·血管的分离 | 第64页 |
·血管的固定 | 第64页 |
·动脉内径标准化 | 第64页 |
·内径标准化方法 | 第64-65页 |
·血管活性检测 | 第65-66页 |
·加药条件下血管张力测定 | 第66页 |
·破坏血管内皮 | 第66页 |
·数据统计 | 第66页 |
3 结果 | 第66-69页 |
·血管活性检测 | 第66-67页 |
·药物作用后血管张力改变情况 | 第67-68页 |
·统计学分析 | 第68-69页 |
4 讨论 | 第69-72页 |
小结 | 第72-74页 |
参考文献 | 第74-88页 |
附录 | 第88-91页 |
一、 生理盐溶液(PSS) | 第88-89页 |
二、 25×浓缩 PSS | 第89-90页 |
三、高钾生理盐溶液(KPSS) | 第90页 |
四、(AP)配制 | 第90-91页 |
个人简历和研究成果 | 第91-93页 |
致谢 | 第93页 |