| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-12页 |
| 第二章 材料和方法 | 第12-21页 |
| 2.1 主要仪器设备 | 第12页 |
| 2.2 主要实验试剂 | 第12-13页 |
| 2.3 实验动物及分组 | 第13页 |
| 2.4 实验方法 | 第13-19页 |
| 2.4.1 动物模型的制作 | 第13-14页 |
| 2.4.2 标本收集和处理 | 第14页 |
| 2.4.3 Real-Time PCR | 第14-16页 |
| 2.4.3.1 抽取脊髓组织总RNA | 第14-15页 |
| 2.4.3.2 mRNA逆转录合成cDNA第一条链 | 第15页 |
| 2.4.3.3 Real-time PCR检测 | 第15-16页 |
| 2.4.4 western blot蛋白测定 | 第16-19页 |
| 2.4.4.1 脊髓组织总蛋白的提取 | 第16-17页 |
| 2.4.4.2 测蛋白质含量(Bradford法) | 第17页 |
| 2.4.4.3 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第17-18页 |
| 2.4.4.4 转膜 | 第18页 |
| 2.4.4.5 抗体孵育和显色 | 第18-19页 |
| 2.5 BBB评分 | 第19-20页 |
| 2.6 结果观察、数据收集与统计学分析 | 第20-21页 |
| 第三章 结果 | 第21-38页 |
| 3.1 一般情况 | 第21页 |
| 3.2 大鼠运动功能恢复情况 | 第21-23页 |
| 3.3 Real-Time PCR表达量变化情况 | 第23-32页 |
| 3.3.1 NT-3基因表达量变化 | 第23-25页 |
| 3.3.2 NgR基因表达量变化 | 第25-27页 |
| 3.3.3 GAP-43基因表达量结果变化 | 第27-29页 |
| 3.3.4 不同组间各检测因子扩增曲线与溶解曲线变化 | 第29-32页 |
| 3.3.4.1 各组间NT-3的扩增曲线和溶解曲线 | 第29-30页 |
| 3.3.4.2 各组间NgR的扩增曲线和溶解曲线 | 第30-31页 |
| 3.3.4.3 各组间GAP-43的扩增曲线和溶解曲线 | 第31-32页 |
| 3.4 Western blot蛋白表达情况 | 第32-38页 |
| 3.4.1 NT-3蛋白表达情况 | 第32-34页 |
| 3.4.2 NgR蛋白表达情况 | 第34-36页 |
| 3.4.3 GAP-43蛋白表达情况 | 第36-38页 |
| 第四章 讨论 | 第38-43页 |
| 4.1 脊髓损伤模型的选择 | 第38页 |
| 4.2 脊髓损伤后运动功能恢复评定的价值 | 第38-39页 |
| 4.3 NgR特异性siRNA在脊髓损伤修复中的作用 | 第39-40页 |
| 4.4 神经营养素-3在脊髓损伤中的作用 | 第40-41页 |
| 4.5 脊髓损伤后GAP-43基因表达的变化 | 第41-43页 |
| 第五章 结论 | 第43-44页 |
| 第六章 本研究的意义及待解决的问题 | 第44-45页 |
| 附图 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 综述 | 第50-59页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 攻读硕士学位期间主要研究成果 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
