| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第7-11页 |
| 文献综述 | 第11-21页 |
| 1.1 巨噬细胞与炎症反应 | 第11-13页 |
| 1.1.1 巨噬细胞简介 | 第11页 |
| 1.1.2 炎症反应及信号通路 | 第11-13页 |
| 1.2 巨噬细胞的极化与代谢 | 第13-17页 |
| 1.2.1 糖酵解的M1型巨噬细胞和氧化代谢的M2型巨噬细胞 | 第13-16页 |
| 1.2.2 巨噬细胞中的低氧诱导因子 | 第16-17页 |
| 1.3 EGCG简介 | 第17-21页 |
| 1.3.1 EGCG的多种作用 | 第18页 |
| 1.3.2 EGCG在细胞膜上的受体 67LR | 第18-21页 |
| 第一章 引言 | 第21-24页 |
| 第二章 材料和方法 | 第24-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-25页 |
| 2.1.1 实验小鼠及细胞 | 第24页 |
| 2.1.2 实验主要试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.3 实验主要仪器设备 | 第25页 |
| 2.2 RAW264.7 细胞系的培养、处理与检测实验 | 第25-34页 |
| 2.2.1 RAW264.7 细胞系的培养 | 第25-26页 |
| 2.2.2 药物处理与待测样品制备 | 第26-29页 |
| 2.2.3 实时荧光定量PCR检测 | 第29-30页 |
| 2.2.4 蛋白浓度测定 | 第30-31页 |
| 2.2.5 酶活测定 | 第31-33页 |
| 2.2.6 葡萄糖测定 | 第33-34页 |
| 2.3 小鼠骨髓细胞的提取、分化、处理与检测实验 | 第34-39页 |
| 2.3.1 小鼠骨髓细胞分化培养液的制备 | 第34页 |
| 2.3.2 小鼠骨髓细胞的提取与诱导分化 | 第34-35页 |
| 2.3.3 小鼠骨髓细胞的分化检测 | 第35页 |
| 2.3.4 药物处理与待测样品制备 | 第35-37页 |
| 2.3.5 实时荧光定量PCR检测 | 第37页 |
| 2.3.6 蛋白浓度测定 | 第37页 |
| 2.3.7 酶活测定 | 第37页 |
| 2.3.8 葡萄糖测定 | 第37-39页 |
| 第三章 结果 | 第39-57页 |
| 3.1 RAW264.7 细胞系实验的检测结果 | 第39-46页 |
| 3.1.1 GLUT1的实时荧光定量PCR和葡萄糖测定结果 | 第39-40页 |
| 3.1.2 HK2的实时荧光定量PCR和酶活测定结果 | 第40-42页 |
| 3.1.3 u-PFK2的实时荧光定量PCR和酶活测定结果 | 第42-44页 |
| 3.1.4 Pkm的实时荧光定量PCR和酶活测定结果 | 第44-46页 |
| 3.2 BMDM的检测结果 | 第46-57页 |
| 3.2.1 小鼠骨髓细胞诱导分化的流式细胞结果 | 第46-47页 |
| 3.2.2 GLUT1的实时荧光定量PCR和葡萄糖测定结果 | 第47-49页 |
| 3.2.3 HK2的实时荧光定量PCR和酶活测定结果 | 第49-51页 |
| 3.2.4 u-PFK2的实时荧光定量PCR和酶活测定结果 | 第51-53页 |
| 3.2.5 Pkm的实时荧光定量PCR和酶活测定结果 | 第53-57页 |
| 第四章 讨论 | 第57-63页 |
| 4.1 EGCG对LPS诱导的小鼠巨噬细胞表达GLUT1的影响 | 第57页 |
| 4.2 EGCG对LPS诱导的小鼠巨噬细胞表达HK2的影响 | 第57-58页 |
| 4.3 EGCG对LPS诱导的小鼠巨噬细胞表达u-PFK2的影响 | 第58-59页 |
| 4.4 EGCG对LPS诱导的小鼠巨噬细胞表达Pkm的影响 | 第59-60页 |
| 4.5 EGCG调节作用机制探讨 | 第60-63页 |
| 第五章 结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文目录 | 第77-78页 |
