| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1 绪论 | 第15-27页 |
| 1.1 菊芋 | 第15-16页 |
| 1.2 菊芋的生物活性物质 | 第16-19页 |
| 1.2.1 菊糖 | 第16-18页 |
| 1.2.2 酚类和萜类化合物 | 第18-19页 |
| 1.3 植物组织培养 | 第19-23页 |
| 1.3.1 组织培养影响因素 | 第19-20页 |
| 1.3.2 植物悬浮细胞培养 | 第20页 |
| 1.3.3 菊芋悬浮细胞培养 | 第20-23页 |
| 1.4 植物生物活性物质的诱导 | 第23-26页 |
| 1.4.1 诱导子 | 第23-25页 |
| 1.4.2 植物生物活性物质的诱导研究现状 | 第25-26页 |
| 1.5 本试验研究的目的及意义 | 第26-27页 |
| 2 菊芋悬浮细胞培养体系建立 | 第27-35页 |
| 2.1 材料与方法 | 第27-29页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第27页 |
| 2.1.2 试剂 | 第27页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第27页 |
| 2.1.4 方法 | 第27-29页 |
| 2.2 结果与分析 | 第29-33页 |
| 2.2.1 愈伤组织的诱导 | 第29页 |
| 2.2.2 菊芋悬浮细胞培养体系的建立及优化 | 第29-32页 |
| 2.2.3 菊芋悬浮细胞生长曲线 | 第32-33页 |
| 2.3 讨论 | 第33-34页 |
| 2.4 本章小结 | 第34-35页 |
| 3 菊芋悬浮细胞中生物活性物质含量检测方法 | 第35-45页 |
| 3.1 材料与方法 | 第35-39页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第35页 |
| 3.1.2 试剂 | 第35页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第35页 |
| 3.1.4 菊糖及酚类物质测定方法 | 第35-38页 |
| 3.1.5 数据分析 | 第38-39页 |
| 3.2 结果与分析 | 第39-43页 |
| 3.2.1 菊糖含量测定 | 第39页 |
| 3.2.2 菊糖聚合度测定 | 第39-40页 |
| 3.2.3 酚类物质提取 | 第40页 |
| 3.2.4 酚类物质含量及抗氧化性测定 | 第40-41页 |
| 3.2.5 14种酚类物质的LC-MS分析 | 第41页 |
| 3.2.6 14种酚类物质的UPLC分析 | 第41-43页 |
| 3.3 讨论 | 第43-44页 |
| 3.4 本章小结 | 第44-45页 |
| 4 菊芋悬浮细胞中菊糖的诱导 | 第45-67页 |
| 4.1 材料与方法 | 第45-47页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第45页 |
| 4.1.2 试剂 | 第45页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第45页 |
| 4.1.4 方法 | 第45-47页 |
| 4.2 结果与分析 | 第47-64页 |
| 4.2.1 诱导浓度对菊芋悬浮细胞生物量的影响 | 第47-48页 |
| 4.2.2 诱导浓度对菊芋悬浮细胞中菊糖含量、产量及聚合度的影响 | 第48-53页 |
| 4.2.3 诱导时间对菊芋悬浮细胞生物量的影响 | 第53-54页 |
| 4.2.4 诱导时间对菊芋悬浮细胞中菊糖含量、产量及聚合度的影响 | 第54-64页 |
| 4.3 讨论 | 第64-65页 |
| 4.4 本章小结 | 第65-67页 |
| 5 菊芋悬浮细胞中酚类物质的诱导 | 第67-121页 |
| 5.1 材料与方法 | 第67-68页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第67页 |
| 5.1.2 试剂 | 第67页 |
| 5.1.3 主要仪器 | 第67页 |
| 5.1.4 方法 | 第67-68页 |
| 5.2 结果与分析 | 第68-117页 |
| 5.2.1 诱导子对菊芋悬浮细胞总酚的影响 | 第68-70页 |
| 5.2.2 诱导浓度对菊芋悬浮细胞中14种酚类物质含量的影响 | 第70-89页 |
| 5.2.3 诱导时间对菊芋悬浮细胞中14种酚类物质含量的影响 | 第89-107页 |
| 5.2.4 诱导子对菊芋悬浮细胞总酚抗氧化性的影响 | 第107-117页 |
| 5.3 讨论 | 第117-120页 |
| 5.4 本章小结 | 第120-121页 |
| 结论 | 第121-123页 |
| 参考文献 | 第123-137页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第137-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
