| 英文缩略词表 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 材料与方法 | 第11-20页 |
| 1 抗体和试剂 | 第11-12页 |
| 2 HEK293T细胞及人原代调节性T细胞的培养 | 第12页 |
| 2.1 HEK293T细胞的培养 | 第12页 |
| 2.2 人原代调节性T细胞的培养 | 第12页 |
| 3 原代调节性T细胞MRNA表达水平检测 | 第12-14页 |
| 3.1 RNA抽提 | 第12-13页 |
| 3.2 反转录 | 第13页 |
| 3.3 实时荧光定量PCR | 第13-14页 |
| 4 免疫共沉淀及NI-NTA PULL DOWN实验 | 第14-16页 |
| 4.1 聚乙烯亚胺Polyethylenimine（PEI）转染 | 第14页 |
| 4.2 抗体共孵育 | 第14-15页 |
| 4.3 Ni-NTA pull down | 第15页 |
| 4.4 Bio-Rad Protein Assay试剂盒用于测定总蛋白含量 | 第15-16页 |
| 4.5 蛋白SDS-PAGE电泳和免疫印记分析 | 第16页 |
| 5 人调节性T细胞功能抑制实验 | 第16-20页 |
| 5.1 慢病毒包装 | 第16-17页 |
| 5.2 细胞分选 | 第17-18页 |
| 5.3 慢病毒感染T细胞 | 第18-19页 |
| 5.4 体外细胞扩增和抑制实验 | 第19页 |
| 5.5 流式细胞分析 | 第19-20页 |
| 6 免疫组化 | 第20页 |
| 7 统计学分析 | 第20页 |
| 结果 | 第20-27页 |
| 1 USP4和IRF8的相互作用验证 | 第20-22页 |
| 2 USP4稳定IRF8蛋白水平验证 | 第22页 |
| 3 USP4对IRF8去泛素化验证 | 第22-24页 |
| 4 USP4通过稳定IRF8调控调节性T细胞功能验证 | 第24-27页 |
| 讨论 | 第27-28页 |
| 结论 | 第28-29页 |
| 参考文献 | 第29-31页 |
| 综述 | 第31-37页 |
| 参考文献 | 第34-37页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第37-38页 |
| 致谢 | 第38页 |
