| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第15-27页 |
| 1.1 核酸酶概述 | 第15-16页 |
| 1.1.1 核酸酶的种类 | 第15-16页 |
| 1.1.2 DNase Ⅰ的结构与功能 | 第16页 |
| 1.2 核酸酶的检测技术的研究现状及应用 | 第16-21页 |
| 1.2.1 核酸酶活性的传统分析方法 | 第17页 |
| 1.2.2 荧光探针法对核酸酶的活性分析 | 第17-18页 |
| 1.2.3 化学发光剂法对核酸酶的活性分析 | 第18-20页 |
| 1.2.4 核酸酶在核酸检测中的应用 | 第20-21页 |
| 1.3 石墨烯在生化分析中的应用 | 第21-26页 |
| 1.3.1 石墨烯基本的概述 | 第21页 |
| 1.3.2 氧化石墨烯的制备方法 | 第21-22页 |
| 1.3.3 氧化石墨烯在核酸酶活性检测中的应用 | 第22页 |
| 1.3.4 氧化石墨烯在核酸检测中的应用 | 第22-24页 |
| 1.3.5 氧化石墨烯在药物运输和细胞成像中的应用 | 第24-26页 |
| 1.4 本研究论文开展的工作内容 | 第26-27页 |
| 第2章 氧化石墨烯和发夹探针用于DNase Ⅰ的活性检测 | 第27-39页 |
| 2.1 前言 | 第27页 |
| 2.2 实验部分 | 第27-30页 |
| 2.2.1 实验原理与探针设计 | 第27-28页 |
| 2.2.2 试剂与仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.3 试验方法 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-37页 |
| 2.3.1 GO对发夹探针的猝灭效率考察 | 第30-31页 |
| 2.3.2 反应条件优化 | 第31-32页 |
| 2.3.3 DNase Ⅰ检测实验 | 第32-33页 |
| 2.3.4 DNaseⅠ的动力学分析 | 第33页 |
| 2.3.5 金属离子对DNaseⅠ活性的影响 | 第33-34页 |
| 2.3.6 药物筛选 | 第34-35页 |
| 2.3.7 结晶紫对血清样品中的DNaseⅠ活性影响 | 第35-36页 |
| 2.3.8 肿瘤样品中的DNaseⅠ检测 | 第36-37页 |
| 2.3.9 凝胶电泳实验 | 第37页 |
| 2.4 小结 | 第37-39页 |
| 第3章 氧化石墨烯发夹探针用于DNaseⅠ靶向药物筛选 | 第39-48页 |
| 3.1 前言 | 第39页 |
| 3.2 实验部分 | 第39-43页 |
| 3.2.1 实验原理与探针设计 | 第39-40页 |
| 3.2.2 试剂和仪器 | 第40页 |
| 3.2.3 试验方法 | 第40-43页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第43-47页 |
| 3.3.1 提取药物的鉴定结果 | 第43页 |
| 3.3.2 反应条件优化 | 第43-44页 |
| 3.3.3 天然药物对DNase Ⅰ的活性影响 | 第44-45页 |
| 3.3.4 药物浓度依赖性分析 | 第45-46页 |
| 3.3.5 MTT实验 | 第46页 |
| 3.3.6 天然药物处理对细胞内DNase Ⅰ活性影响 | 第46-47页 |
| 3.4 小结 | 第47-48页 |
| 第4章 氧化石墨烯发夹探针用于S1核酸酶的实时检测和抑制剂筛选 | 第48-57页 |
| 4.1 前言 | 第48页 |
| 4.2 实验部分 | 第48-50页 |
| 4.2.1 实验原理与探针设计 | 第48-49页 |
| 4.2.2 试剂和仪器 | 第49-50页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第50页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第50-55页 |
| 4.3.1 发夹探针长度对反应的影响 | 第50-51页 |
| 4.3.2 Mg~(2+)对反应速度的影响 | 第51页 |
| 4.3.3 GO-P1的制备与可行性分析 | 第51-52页 |
| 4.3.4 温度和pH对反应的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.5 基于GO-P1传感体系对S1核酸酶实时监测 | 第53-54页 |
| 4.3.6 发夹探针的特异性分析 | 第54页 |
| 4.3.7 金属离子对S1核酸酶活性影响 | 第54-55页 |
| 4.3.8 S1核酸酶抑制剂的筛选 | 第55页 |
| 4.4 小结 | 第55-57页 |
| 结论与展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 附录 攻读硕士学位期间参与发表论文和专利 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
